Abstract Coronaviruses use diverse Spike (S) glycoproteins to attach to host receptors and fuse with target cells. Using a broad screening approach, we isolated from SARS-CoV-2 immune donors seven monoclonal antibodies (mAbs) that bind to all human alpha and beta coronavirus S proteins. These mAbs recognize the fusion peptide and acquire high affinity and breadth through somatic mutations. Despite targeting a conserved motif, only some mAbs show broad neutralizing activity in vitro against alpha and beta coronaviruses, including Omicron BA.1 variant and bat WIV-1, and reduce viral titers and pathology in vivo. Structural and functional analyses show that the fusion peptide-specific mAbs bind with different modalities to a cryptic epitope which is concealed by prefusion-stabilizing ‘2P’ mutations and becomes exposed upon binding of ACE2 or ACE2-mimicking mAbs. This study identifies a new class of pan-coronavirus neutralizing mAbs and reveals a receptor-induced conformational change in the S protein that exposes the fusion peptide region.

Abstract Clinical progression of tauopathies is reflected by the transcellular propagation of pathogenic Tau seeds with the possible involvement of extracellular vesicles as transport vectors. However, the mechanism regulating extracellular vesicle cargo delivery to recipient cells is poorly understood. We established a cell model for investigating extracellular vesicle-delivery of membranes and proteins. In this model, extracellular vesicles are readily internalized and accumulate in endolysosomes. For the first time, we show that in this acidic compartment of recipient cells, extracellular vesicle-delivered Tau seeds cause the accumulation and abnormal folding of normal Tau by a process that requires the participation of autophagy. Endolysomes represent thus a cross-road where Tau seeds released from extracellular vesicles propagate on cellular Tau on its route for autophagy-mediated degradation, ultimately driving its accumulation, endolysosomal stress and cytotoxicity. Whilst, autophagy stimulation is considered as a viable solution to protect neurons from harmful cytosolic protein inclusions, our data suggest that this approach may favour the aberrant accumulation of neurodegeneration-associated proteins induced by exogenous pathogenic protein forms, with possible implications in the spreading of the disease.

The endoplasmic reticulum (ER) is a dynamic organelle of nucleated cells that produces proteins, lipids and oligosaccharides. The volume and the activities of the ER are adapted to cellular needs. They are increased upon induction of unfolded protein responses (UPR 1 ) and are reduced upon activation of ER-phagy programs 2 . A specialized domain of the ER, the nuclear envelope (NE), protects the cell genome with two juxtaposed lipid bilayers, the inner and outer nuclear membranes (INM and ONM). SUN proteins in the INM form disulfide-bonded Linker of Nucleoskeleton and Cytoskeleton (LINC) complexes with NESPRIN proteins in the ONM. These complexes set and maintain the width of the periplasmic space (PS), a continuum of the ER lumen, below the 50 nm 3-5 and in yeast prevent transmission of ER volume variations to the PS 6,7 . Here we report that expansion of the mammalian ER upon homeostatic perturbations is transmitted to the NE, where the ONM forms large bulges. The process is reverted on recovery of ER homeostasis, by asymmetric vesiculation and autophagic clearance of ONM portions. Remodeling of the mammalian NE requires TMX4-driven reduction of the inter molecular disulfide bond stabilizing LINC complexes, the LC3 lipidation machinery, and the autophagy receptor SEC62, identified here as the first mammalian nucleo-phagy receptor.

ABSTRACT During melanoma metastasization, tumor cells originated in the skin migrate via lymphatic vessels to the sentinel lymph node (sLN) in a process that facilitates their spread across the body. Here, we characterized the innate inflammatory responses to melanoma metastasis in the sLN. For this purpose, we confirmed the migration of fluorescent metastatic melanoma cells to the sLN and we characterized the inflammatory response in the metastatic microenvironment. We found that macrophages located in the subcapsular sinus (SSM), produce pro-tumoral IL-1α after recognition of tumor antigens. Moreover, we confirmed that the administration of an anti-IL-1α depleting antibody reduced metastasis. Conversely, the administration of recombinant IL-1α accelerated the lymphatic spreading of the tumor. Additionally, the elimination of the macrophages significantly reduced the progression of the metastatic spread. To understand the mechanism of action of IL-1α in the context of the lymph node microenvironment, we applied single-cell RNA sequencing to dissected metastases obtained from animals treated with an anti-IL-1α blocking antibody. Amongst the different pathways affected, we identified STAT3 as one of the main targets of IL-1α signaling in metastatic cells. Moreover, we found that the anti-IL-1α anti-tumoral effect was not mediated by lymphocytes, as IL-1R1 KO mice did not show any improvement in metastasis growth. Finally, we found a synergistic anti-metastatic effect of the combination of IL-1α blocking and the STAT3 inhibitor (STAT3i) stattic. In summary, we described a new mechanism by which SSM support melanoma metastasis, highlighting a new target for immunotherapy.