Abstract Neutralizing antibodies (NAbs) can prevent and treat infections caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2). However, continuously emerging variants, such as Omicron, have significantly reduced the potency of most known NAbs. The selection of NAbs with broad neutralizing activities and the identification of conserved critical epitopes are still urgently needed. Here, we identified an extremely potent antibody (55A8) by single B-cell sorting from convalescent SARS-CoV-2-infected patients that recognized the receptor-binding domain (RBD) in the SARS-CoV-2 spike (S) protein. 55A8 could bind to wild-type SARS-CoV-2, Omicron BA.1 and Omicron BA.2 simultaneously with 58G6, a NAb previously identified by our group. Importantly, an antibody cocktail containing 55A8 and 58G6 (2-cocktail) showed synergetic neutralizing activity with a half-maximal inhibitory concentration (IC 50 ) in the picomolar range in vitro and prophylactic efficacy in hamsters challenged with Omicron (BA.1) through intranasal delivery at an extraordinarily low dosage (25 μg of each antibody daily) at 3 days post-infection. Structural analysis by cryo-electron microscopy (cryo-EM) revealed that 55A8 is a Class III NAb that recognizes a highly conserved epitope. It could block angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) binding to the RBD in the S protein trimer via steric hindrance. The epitopes in the RBD recognized by 55A8 and 58G6 were found to be different and complementary, which could explain the synergetic mechanism of these two NAbs. Our findings not only provide a potential antibody cocktail for clinical use against infection with current SARS-CoV-2 strains and future variants but also identify critical epitope information for the development of better antiviral agents.

Abstract Fusion with host cell membrane is the main mechanism of infection of SARS-CoV-2. Here, we propose a new strategy to double block SARS-CoV-2 membrane fusion by using Harringtonine (HT), a small-molecule antagonist. By using cell membrane chromatography (CMC), we found that HT specifically targeted the SARS-CoV-2 S protein and host cell TMPRSS2, and then confirmed that HT can inhibit pseudotyped virus membrane fusion. Furthermore, HT successfully blocked SARS-CoV-2 infection, especially in the delta and Omicron mutant. Since HT is a small-molecule antagonist, it is minimally affected by the continuous variation of SARS-CoV-2. Our findings show that HT is a potential small-molecule antagonist with a new mechanism of action against SARS-CoV-2 infection, and thus HT mainly targets the S protein, and thus, greatly reduces the damage of the S protein’s autotoxicity to the organ system, has promising advantages in the clinical treatment of COVID-19.

ABSTRACT SARS-CoV-2 has infected more than 400 million people around the globe and caused millions of deaths. Since its identification in November 2021, Omicron, a highly transmissible variant, has become the dominant variant in most countries. Omicron’s highly mutated spike protein, the main target of vaccine development, significantly compromises the immune protection from current vaccination. We develop an mRNA vaccine (S Omicron -6P) based on an Omicron-specific sequence. In mice, S Omicron -6P shows superior neutralizing antibodies inducing abilities to a clinically approved inactivated virus vaccine, a clinically approved protein subunit vaccine, and an mRNA vaccine (S WT -2P) with the same sequence of BNT162b2 RNA. Significantly, S Omicron -6P induces a 14.4∼27.7-fold and a 28.3∼50.3-fold increase of neutralizing activity against the pseudovirus of Omicron and authentic Omicron compared to S WT -2P, respectively. In addition, two doses S Omicron -6P significantly protects Syrian hamsters against challenge with SARS-CoV-2 Omicron variant and elicits high titers of nAbs in a dose-dependent manner in macaques. Our results suggest that S Omicron -6P offers advantages over current vaccines, and it will be helpful for those with weak immunity.

Abstract Coronavirus disease 2019 (COVID-19), which is triggered by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) infection, continues to threaten global public health. Developing a vaccine that only requires single immunization but provides long-term protection for the prevention and control of COVID-19 is important. Here, we developed an adeno-associated virus (AAV)-based vaccine expressing a stable receptor-binding domain (SRBD) protein. The vaccine requires only a single shot but provides effective neutralizing antibodies (NAbs) over 598 days in rhesus macaques ( Macaca mulatta ). Importantly, our results showed that the NAbs were kept in high level and long lasting against authentic wild-type SARS-CoV-2, Beta, Delta and Omicron variants using plaque reduction neutralization test. Of note, although we detected pre-existing AAV2/9 antibodies before immunization, the vaccine still induced high and effective NAbs against COVID-19 in rhesus macaques. AAV-SRBD immune serum also efficiently inhibited the binding of ACE2 with RBD in the SARS-CoV-2 B.1.1.7 (Alpha), B.1.351 (Beta), P.1/P.2 (Gamma), B.1.617.2 (Delta), B.1.617.1/3(Kappa), and C.37 (Lambda) variants. Thus, these data suggest that the vaccine has great potential to prevent the spread of SARS-CoV-2.

Abstract Following Delta, Omicron variant triggered a new wave of SARS-CoV-2 infection globally, adaptive evolution of the virus may not stop, the development of broad-spectrum antivirals is still urgent. We previously developed two hetero-bivalent nanobodies with potent neutralization against original WT SARS-CoV-2, termed aRBD-2-5 and aRBD-2-7, by fusing aRBD-2 with aRBD-5 or aRBD-7, respectively. Here, we resolved crystal structures of these nanobodies in complex with RBD, and found the epitope of aRBD-2 differs from that of aRBD-5, aRBD-7. aRBD-2 binds to a conserved epitope which renders its binding activity to all variants of concern (VOCs) including Omicron. Interestingly, although monovalent aRBD-5 and aRBD-7 lost binding to some variants, they effectively improved the overall affinity when transformed into the hetero-bivalent form after being fused with aRBD-2. Consistent with the high binding affinities, aRBD-2-5-Fc and aRBD-2-7-Fc exhibited ultra-potent neutralization to all five VOCs; particularly, aRBD-2-5-Fc neutralized authentic virus of Beta, Delta and Omicron with the IC 50 of 5.98∼9.65 ng/mL or 54.3∼87.6 pM. Importantly, aRBD-2-5-Fc provided in vivo prophylactic protection for mice against WT and mouse-adapted SARS-CoV-2, and provided full protection against Omicron in hamster model when administrated either prophylactically or therapeutically. Taken together, we found a conserved epitope on RBD, and hetero-bivalent nanobodies had increased affinity for VOCs over its monovalent form, and provided potent and broad-spectrum protection both in vitro and in vivo against all tested major variants, and potentially future emerging variants. Our strategy provides a new solution in the development of therapeutic antibodies for COVID-19 caused by newly emergent VOCs.