Protein phosphorylation is a key post-translational modification regulating protein function in almost all cellular processes. Although tens of thousands of phosphorylation sites have been identified in human cells, approaches to determine the functional importance of each phosphosite are lacking. Here, we manually curated 112 datasets of phospho-enriched proteins, generated from 104 different human cell types or tissues. We re-analyzed the 6,801 proteomics experiments that passed our quality control criteria, creating a reference phosphoproteome containing 119,809 human phosphosites. To prioritize functional sites, we used machine learning to identify 59 features indicative of proteomic, structural, regulatory or evolutionary relevance and integrate them into a single functional score. Our approach identifies regulatory phosphosites across different molecular mechanisms, processes and diseases, and reveals genetic susceptibilities at a genomic scale. Several regulatory phosphosites were experimentally validated, including identifying a role in neuronal differentiation for phosphosites in SMARCC2, a member of the SWI/SNF chromatin-remodeling complex.

Summary Intracellular bacterial pathogens inject effector proteins into host cells to hijack diverse cellular processes and promote their survival and proliferation. To systematically map effector-host protein-protein interactions (PPIs) during infection, we generated a library of 32 Salmonella enterica serovar Typhimurium ( S Tm) strains expressing chromosomally encoded affinity-tagged effector proteins, and quantified PPIs in macrophages and epithelial cells by Affinity-Purification Quantitative Mass-Spectrometry. Thereby, we identified 25 previously described and 421 novel effector-host PPIs. While effectors converged on the same host cellular processes, most had multiple targets, which often differed between cell types. Using reciprocal co-immunoprecipitations, we validated 13 out of 22 new PPIs. We then used this host-pathogen physical interactome resource to demonstrate that SseJ and SseL collaborate in redirecting cholesterol to the Salmonella Containing Vacuole (SCV) via NPC1, PipB directly recruits the organelle contact site protein PDZD8 to the SCV, and SteC promotes actin bundling by directly phosphorylating formin-like proteins.

Protein phosphorylation is the best characterized post-translational modification that regulates almost all cellular processes through diverse mechanisms such as changing protein conformations, interactions, and localization. While the inventory for phosphorylation sites across different species has rapidly expanded, their functional role remains poorly investigated. Here, we have combined 537,321 phosphosites from 40 eukaryotic species to identify highly conserved phosphorylation 'hotspot' regions within domain families. Mapping these regions onto structural data revealed that they are often found at interfaces, near catalytic residues and tend to harbor functionally important phosphosites. Notably, functional studies of a phospho-deficient mutant in the C-terminal hotspot region within the Ribosomal S11 domain in the yeast ribosomal protein uS11 showed cold-sensitive phenotype and impaired 20S pre-rRNA processing. Altogether, our study identified phosphorylation hotspots for 162 protein domains suggestive of an ancient role for the control of diverse eukaryotic domain families.

Phosphorylation is a critical post-translational modification involved in the regulation of almost all cellular processes. However, less than 5% of thousands of recently discovered phosphorylation sites have a known function. Here, we devised a chemical genetic approach to study the functional relevance of phosphorylation in S. cerevisiae. We generated 474 phospho-deficient mutants that, along with the gene deletion library, were screened for fitness in 102 conditions. Of these, 42% exhibited growth phenotypes, suggesting these phosphosites are likely functional. We inferred their function based on the similarity of their growth profiles with that of gene deletions, and validated a subset by thermal proteome profiling and lipidomics. While some phospho-mutants showed loss-of-function phenotypes, a higher fraction exhibited phenotypes not seen in the corresponding gene deletion suggestive of a gain-of-function effect. For phosphosites conserved in humans, the severity of the yeast phenotypes is indicative of their human functional relevance. This study provides a roadmap for functionally characterizing phosphorylation in a systematic manner.

Protein kinases lie at the heart of cell signalling processes, constitute one of the largest human domain families and are often mutated in disease. Kinase target recognition at the active site is in part determined by a few amino acids around the phosphoacceptor residue. These preferences vary across kinases and despite the increased knowledge of target substrates little is known about how most preferences are encoded in the kinase sequence and how these preferences evolve. Here, we used alignment-based approaches to identify 30 putative specificity determinant residues (SDRs) for 16 preferences. These were studied using structural models and were validated by activity assays of mutant kinases. Mutation data from patient cancer samples revealed that kinase specificity is often targeted in cancer to a greater extent than catalytic residues. Throughout evolution we observed that kinase specificity is strongly conserved across orthologs but can diverge after gene duplication as illustrated by the evolution of the G-protein coupled receptor kinase family. The identified SDRs can be used to predict kinase specificity from sequence and aid in the interpretation of evolutionary or disease-related genomic variants.

Protein phosphorylation is a key post-translational modification regulating protein function in almost all cellular processes. While tens of thousands of phosphorylation sites have been identified in human cells to date, the extent and functional importance of the phosphoproteome remains largely unknown. Here, we have analyzed 6,801 publicly available phospho-enriched mass spectrometry proteomics experiments, creating a state-of-the-art phosphoproteome containing 119,809 human phosphosites. To prioritize functional sites, 59 features indicative of proteomic, structural, regulatory or evolutionary relevance were integrated into a single functional score using machine learning. We demonstrate how this prioritization identifies regulatory phosphosites across different molecular mechanisms and pinpoint genetic susceptibilities at a genomic scale. Several novel regulatory phosphosites were experimentally validated including a role in neuronal differentiation for phosphosites present in the SWI/SNF SMARCC2 complex member. The scored reference phosphoproteome and its annotations identify the most relevant phosphorylations for a given process or disease addressing a major bottleneck in cell signaling studies.

Loss-of-function (LoF) mutations associated with disease don't manifest equally in different individuals, a phenomenon known as incomplete penetrance. The impact of the genetic background on incomplete penetrance remains poorly characterized. Here, we systematically assessed the changes in gene deletion phenotypes for 3,786 gene knockouts in four Saccharomyces cerevisiae strains and 38 conditions. We observed 16% to 42% of deletion phenotypes changing between pairs of strains with a small fraction conserved in all strains. Conditions causing higher WT growth differences and the deletion of pleiotropic genes showed above average changes in phenotypes. We further illustrate how these changes affect the interpretation of the impact of genetic variants across 925 yeast isolates. These results show the high degree of genetic background dependencies for LoF phenotypes.