Hepatic resection is the most curative treatment option for early-stage hepatocellular carcinoma, but is associated with a high recurrence rate, which exceeds 50% at 5 years after surgery. Understanding the genetic basis of hepatocellular carcinoma at surgically curable stages may enable the identification of new molecular biomarkers that accurately identify patients in need of additional early therapeutic interventions. Whole exome sequencing and copy number analysis was performed on 231 hepatocellular carcinomas (72% with hepatitis B viral infection) that were classified as early-stage hepatocellular carcinomas, candidates for surgical resection. Recurrent mutations were validated by Sanger sequencing. Unsupervised genomic analyses identified an association between specific genetic aberrations and postoperative clinical outcomes. Recurrent somatic mutations were identified in nine genes, including TP53, CTNNB1, AXIN1, RPS6KA3, and RB1. Recurrent homozygous deletions in FAM123A, RB1, and CDKN2A, and high-copy amplifications in MYC, RSPO2, CCND1, and FGF19 were detected. Pathway analyses of these genes revealed aberrations in the p53, Wnt, PIK3/Ras, cell cycle, and chromatin remodeling pathways. RB1 mutations were significantly associated with cancer-specific and recurrence-free survival after resection (multivariate P = 0.038 and P = 0.012, respectively). FGF19 amplifications, known to activate Wnt signaling, were mutually exclusive with CTNNB1 and AXIN1 mutations, and significantly associated with cirrhosis (P = 0.017). Conclusion: RB1 mutations can be used as a prognostic molecular biomarker for resectable hepatocellular carcinoma. Further study is required to investigate the potential role of FGF19 amplification in driving hepatocarcinogenesis in patients with liver cirrhosis and to investigate the potential of anti-FGF19 treatment in these patients. (Hepatology 2014;60:1971–1981)

Abstract The pandemic SARS-CoV-2 (Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2) has created a widespread panic across the globe especially in the developing countries like Pakistan. The lack of resources and technical staff are causing havoc challenges in the detection and prevention of this global outbreak. Therefore, a less expensive and massive screening of suspected individuals for COVID-19 is required. In this study, a user-friendly technique of reverse transcription-loop mediated isothermal amplification (RT-LAMP) was designed and validated to suggest a potential RT-qPCR alternate for rapid testing of COVID-19 suspected individuals. A total of 12 COVID-19 negative and 72 COVID-19 suspected individuals were analyzed. Both RT-qPCR and RT-LAMP assays were performed for all the individuals using open reading frame (ORF 1ab), nucleoprotein (N) and Spike (S) genes. All 12 specimens which were negative using RT-qPCR were also found negative using RT-LAMP assay. Overall 62 out of 72 positive samples (detected using RT-qPCR) were found COVID-19 positive using RT-LAMP assay. Interestingly all samples (45) having Ct values less than 30 showed 100% sensitivity. However, samples with weaker Ct values (i.e., => 35) showed 54% concordance, suggesting potential false negatives or false positives in RT-LAMP or RT-qPCR results, respectively. Overall comparative assessment showed that RT-LAMP assay showed strong sensitivity and specificity and can be used as an alternative strategy for rapid COVID-19 testing. Hence, based on fast processing time, minimal risk of specimens transfer and utilizing available resources, LAMP based detection of COVID-19 is strongly advocated especially for developing countries.