Abstract Chemokine receptors constitute an important subfamily of G protein-coupled receptors (GPCRs), and they are critically involved in a broad range of immune response mechanisms. Ligand promiscuity among these receptors makes them an interesting target to explore novel aspects of biased agonism. Here, we comprehensively characterize two chemokine receptors namely, CXCR4 and CXCR7, which share a common chemokine agonist (CXCL12), in terms of their G-protein coupling, β-arrestin (βarr) recruitment, contribution of GRKs, and ERK1/2 MAP kinase activation. We observe that CXCR7 lacks G-protein coupling while maintaining robust βarr recruitment with a major contribution of GRK5/6. On the other hand, CXCR4 displays robust G-protein activation as expected, however, it exhibits significantly reduced βarr-coupling compared to CXCR7 in response to their shared natural agonist, CXCL12. These two receptors induce distinct βarr conformations even when activated by the same agonist, and CXCR7, unlike CXCR4, fails to activate ERK1/2 MAP kinase. We further determine the crystal structure of βarr2 in complex with a carboxyl-terminal phosphopeptide derived from CXCR7, which reveals a smaller interdomain rotation than observed previously for activated βarrs. Importantly, structure-guided cellular experiments reveal a key contribution of a single phosphorylation site in CXCR7 on βarr recruitment and endosomal trafficking. Taken together, our study provides molecular insights into intrinsic bias encoded in the CXCR4-CXCR7 system, and it has broad implications for therapeutically important framework of biased agonism.

ABSTRACT The peritumoral stroma is a complex 3D tissue that provides cells with myriad biophysical and biochemical cues. Histologic observations suggest that during metastatic spread of carcinomas, these cues influence transformed epithelial cells, prompting a diversity of migration modes spanning single cell and multicellular phenotypes. Purported consequences of these variations in tumor escape strategies include differential metastatic capability and therapy resistance. Therefore, understanding how cues from the peritumoral stromal microenvironment regulate migration mode phenotypes has prognostic and therapeutic value. Here, we utilize a synthetic stromal mimetic in which matrix fiber density and bulk hydrogel stiffness can be orthogonally tuned to investigate the contribution of these two key matrix attributes on MCF10A migration mode phenotypes, epithelial-mesenchymal transition (EMT), and invasive potential. We developed an automated computational image analysis framework to extract migratory phenotypes from fluorescent images and determine 3D migration metrics relevant to metastatic spread. Using this analysis, we find that matrix fiber density and bulk hydrogel stiffness distinctly contribute to a variety of MCF10A migration modes including amoeboid, single mesenchymal, multicellular clusters, and collective strands. Taking advantage of the tunability of this material platform, we identify a combination of physical and soluble cues that induces distinct heterogeneous migration modes originating from the same MCF10A spheroid and use this setting to examine a functional consequence of migration mode – apoptotic resistance. We find that cells migrating as part of collective strands are more resistant to staurosporine-induced apoptosis than either disconnected multicellular clusters or individual invading cells. Improved models of the peritumoral stromal microenvironment that help elucidate relationships between matrix attributes and cell migration mode can contribute to ongoing efforts to identify efficacious cancer therapeutics that address migration plasticity-based therapy resistances.

Abstract Self-sufficiency (autonomy) in growth signaling, the earliest recognized hallmark of cancer, is fueled by the tumor cell’s ability to ‘secrete-and-sense’ growth factors; this translates into cell survival and proliferation that is self-sustained by auto-/paracrine secretion. A Golgi-localized circuitry comprised of two GTPase switches has recently been implicated in the orchestration of growth signaling autonomy. Using breast cancer cells that are either endowed or impaired (by gene editing) in their ability to assemble the circuitry for growth signaling autonomy, here we define the transcriptome, proteome, and phenome of such autonomous state, and unravel its role during cancer progression. We show that autonomy is associated with enhanced molecular programs for stemness, proliferation, and epithelial-mesenchymal plasticity (EMP). Autonomy is both necessary and sufficient for anchorage-independent growth factor-restricted proliferation and resistance to anti-cancer drugs and is required for metastatic progression. Transcriptomic and proteomic studies show that autonomy is associated, with a surprising degree of specificity, to self-sustained EGFR/ErbB signaling. Derivation of a gene expression signature for autonomy revealed that growth signaling autonomy is uniquely induced in circulating tumor cells (CTCs), the harshest phase in the life of tumor cells when it is deprived of biologically available EGF. We also show that autonomy in CTCs tracks therapeutic response and prognosticates outcome. These data support a role for growth signaling autonomy in multiple processes essential for the blood-borne dissemination of human breast cancer. GRAPHIC ABSTRACT: Significance Statement A Golgi-localized molecular circuitry has been recently implicated in the orchestration of secrete-and-sense auto-/paracrine loops that impart self-sufficiency in growth signaling, a.k.a., growth signaling autonomy. Using a transdisciplinary approach, this work shows that growth signaling autonomy is uniquely induced in tumor cells that are in circulation. Circulating tumor cells (CTCs) represent a brutish and risky phase in the lifetime of tumor cells when they are exposed to the immune system and hemodynamic sheer forces, all in the setting of growth factor starvation. Cancer cells appear to rely on the autonomy circuit to survive and enhance their fitness to seed metastases. Autonomy generates the kind of ‘eat-what-you-kill’ entrepreneurial spirit which minimizes the risk of CTCs dying on an otherwise risky journey.

Abstract Upon sensing DNA double-strand breaks (DSBs), eukaryotic cells either die or repair DSBs via one of two competing pathways, i.e., non-homologous end-joining (NHEJ) or homologous recombination (HR). We show that cell fate after DNA damage hinges on the guanine nucleotide-exchange modulator of heterotrimeric G-protein, Giα•βγ, GIV/Girdin. GIV suppresses HR by binding and sequestering BRCA1, a key coordinator of multiple steps within the HR pathway, away from DSBs; it does so using a C-terminal motif that binds BRCA1’s BRCT-modules via both phospho-dependent and -independent mechanisms. GIV promotes NHEJ, and binds and activates Gi and enhances the ‘free’ Gβγ→PI-3-kinase→Akt pathway, thus revealing the enigmatic origin of prosurvival Akt signals during dsDNA repair. Absence of GIV, or the loss of either of its two functions impaired DNA repair, and induced cell death when challenged with numerous cytotoxic agents. That GIV selectively binds few other BRCT-containing proteins suggests convergent signaling such that heterotrimeric G-proteins may finetune sensing, repair, and outcome after DNA damage. GRAPHIC ABSTRACT HIGHLIGHTS Non-receptor G protein modulator, GIV/Girdin binds BRCA1 Binding occurs in both canonical and non-canonical modes GIV sequesters BRCA1 away from dsDNA breaks, suppresses HR Activation of Gi by GIV enhances Akt signals, favors NHEJ IN BRIEF In this work, the authors show that heterotrimeric G protein signaling that is triggered by non-receptor GEF, GIV/Girdin, in response to double-stranded DNA breaks is critical for decisive signaling events which favor non-homologous end-joining (NHEJ) and inhibit homologous recombination (HR).

Abstract Estrogen receptor-positive (ER+) breast cancer commonly disseminates to bone marrow, where interactions with mesenchymal stromal cells (MSCs) shape disease trajectory. We modeled these interactions with tumor-MSC co-cultures and used an integrated transcriptome-proteome-network-analyses workflow to identify a comprehensive catalog of contact-induced changes. Conditioned media from MSCs failed to recapitulate genes and proteins, some borrowed and others tumor-intrinsic, induced in cancer cells by direct contact. Protein-protein interaction networks revealed the rich connectome between ‘borrowed’ and ‘intrinsic’ components. Bioinformatics prioritized one of the ‘borrowed’ components, CCDC88A /GIV, a multi-modular metastasis-related protein that has recently been implicated in driving a hallmark of cancer, growth signaling autonomy. MSCs transferred GIV protein to ER+ breast cancer cells (that lack GIV) through tunnelling nanotubes via connexin (Cx)43-facilitated intercellular transport. Reinstating GIV alone in GIV-negative breast cancer cells reproduced ∼20% of both the ‘borrowed’ and the ‘intrinsic’ gene induction patterns from contact co-cultures; conferred resistance to anti-estrogen drugs; and enhanced tumor dissemination. Findings provide a multiomic insight into MSC→tumor cell intercellular transport and validate how transport of one such candidate, GIV, from the haves (MSCs) to have-nots (ER+ breast cancer) orchestrates aggressive disease states.

Chemotaxis drives critical processes in cancer metastasis. While commonly studied at the population scale, metastasis arises from small numbers of cells that successfully disseminate, underscoring the need to analyze chemotaxis at single-cell resolution. Here we focus on chemotaxis driven by the CXCL12-CXCR4 pathway, a signaling network that promotes metastasis in more than 20 different human cancers. CXCL12-CXCR4 activates ERK and Akt, kinases known to promote chemotaxis, but how cells couple signaling to chemotaxis remain poorly defined. To address this challenge, we implemented single-cell analysis of MDA-MB-231 breast cancer cells migrating in a chemotaxis device towards chemokine CXCL12. We integrated live, single-cell imaging with advanced computational analysis methods to discover processes defining subsets of cells that move efficiently toward a CXCL12 gradient. We identified dynamic oscillations in ERK and Akt signaling and associated morphological transitions as key determinants of successful chemotaxis. Cells with effective chemotaxis toward CXCL12 exhibit faster and more persistent movement than non-migrating cells, but both cell populations show similar random motion. Migrating cells exhibit higher amplitude fluctuations in ERK and Akt signaling and greater frequencies of generating lateral cell membrane protrusions. Interestingly, computational analysis reveals less correlated network coupling of signaling and morphological changes in migrating cells. These data reveal processing events that enable cells to convert a signaling input to chemotaxis and highlight how cells in a uniform environment produce heterogeneous responses.