Abstract Nuclear mRNA metabolism is regulated by multiple proteins, which either directly bind to RNA or form multi-protein complexes. The RNA-binding protein ZC3H11A is involved in nuclear mRNA export, and NF-κB signaling and is essential during mouse embryo development. Furthermore, previous studies have shown that ZC3H11A is important for nuclear-replicating viruses. However, detailed biochemical characterization of the ZC3H11A protein has been lacking. In this study, we established the ZC3H11A protein interactome in human and mouse cells. We demonstrate that the nuclear poly(A)-binding protein PABPN1 interacts specifically with the ZC3H11A protein and controls ZC3H11A localization into nuclear speckles. We report that ZC3H11A specifically interacts with the human adenovirus type 5 (HAdV-5) capsid mRNA in a PABPN1-dependent manner. Notably, ZC3H11A uses the same zinc finger motifs to interact with PABPN1 and mRNA, with a single zinc finger motif responsible for these functions. Further, we demonstrate that the lack of ZC3H11A alters the polyadenylation of HAdV-5 capsid mRNA. Taken together, our results suggest that the ZC3H11A protein acts as a novel regulator of polyadenylation of nuclear mRNA.

p53 is a tumor suppressor protein with multiple isoforms that have shared or specific functions. However, two of its isoforms, Δ133p53 and Δ160p53, with large N-terminal deletions, can aggressively cause cancer. These isoforms exert a dominant negative effect on full-length p53 (FLp53), although the precise molecular mechanisms are unknown. Here, we investigated the mechanisms of action of Δ133p53 and Δ160p53 isoforms using chromatin immunoprecipitation, luciferase expression, subcellular fractionation, and immunofluorescence assays. Our study elucidates that these DNA-binding deficient p53 isoforms form hetero-tetrameric complexes with FLp53 and disrupt FLp53's DNA binding and transcriptional activities when present in a higher proportion than FLp53 in the tetramer. However, these structurally unstable isoforms promote vigorous protein aggregation involving FLp53, disrupting its structure and sequestering it in the cytoplasmic and nuclear aggregates, thereby limiting its availability to function as a transcription activator protein. Thus, co-aggregation of Δ133p53 and Δ160p53 with FLp53, rather than hetero-tetramerization, is the primary factor contributing to their dominant-negative effect. Modulating the stability and aggregation of p53 isoforms could be a novel strategy for cancer therapy.

ABSTRACT The controlled release of mitochondrial content into the cytosol has emerged as one of the key steps in mitochondrial signaling. In particular, the release of mitochondrial DNA (mtDNA) into the cytosol has been shown to activate interferon beta (IFN-β) gene expression to execute the innate immune response. In this report, we show that human adenovirus type 5 (HAdV-C5) infection induces the release of mtDNA into the cytosol. The release of mtDNA is mediated by the viral minor capsid protein VI (pVI), which localizes to mitochondria. The presence of the mitochondrial membrane proteins Bak and Bax are needed for the mtDNA release, whereas the viral E1B-19K protein blocked pVI-mediated mtDNA release. Surprisingly, the pVI-mediated mtDNA release did not increase but inhibited the IFN-β gene expression. Notably, the pVI expression caused mitochondrial leakage of the HSP60 protein. The latter prevented specific phosphorylation of the interferon regulatory factor 3 (IRF3) needed for IFN-β gene expression. Overall, we assign a new mitochondria and IFN-β signaling-modulating function to the HAdV-C5 minor capsid protein VI. IMPORTANCE Human adenoviruses (HAdVs) are common pathogens causing various self-limiting diseases, including conjunctivitis and the common cold. HAdVs need to interfere with multiple cellular signaling pathways during the infection to gain control over the host cell. In this study, we identified human adenovirus type 5 (HAdV-C5) minor capsid protein VI as a factor modulating mitochondrial membrane integrity and mitochondrial signaling. We show that pVI-altered mitochondrial signaling impedes the cell’s innate immune response, which may benefit HAdV growth. Overall, our study provides new detailed insights into the HAdV-mitochondria interactions and signaling. This knowledge is helpful when developing new anti-viral treatments against pathogenic HAdV infections and improving HAdV-based therapeutics.