Iron (Fe) is a trace nutrient required by nearly all organisms. As a result of the demand for Fe and the toxicity of non-chelated cytosolic ionic Fe, regulatory systems have evolved to tightly balance Fe acquisition and usage while limiting overload. In most bacteria, including the mammalian pathogen Staphylococcus aureus, the ferric uptake regulator (Fur) is the primary transcriptional regulator that controls the transcription of genes that code for Fe uptake and utilization proteins. YlaN was demonstrated to be essential in Bacillus subtilis unless excess Fe is added to the growth medium, suggesting a role in Fe homeostasis. Here, we demonstrate that YlaN is expendable in Staphylococcus aureus; however, YlaN became essential upon Fe deprivation. A null fur allele bypassed the essentiality of YlaN. The transcriptional response of Fur derepression resulted in a reprogramming of metabolism to prioritize fermentative growth over respiratory growth. The absence of YlaN diminished the derepression of Fur-dependent transcription during Fe limitation. Bioinformatic analyses suggest that ylaN was recruited to Gram positive bacteria and once acquired was maintained in the genome as it co-evolved with Fur. Consistent with a role for YlaN in influencing Fur-dependent regulation, YlaN and Fur interacted in vivo. YlaN bound Fe(II) in vitro using oxygen or nitrogen ligands with an association constant that is consistent with a physiological role in Fe sensing and/or buffering. These findings have led to a model wherein YlaN is an Fe(II) binding protein that influences Fur-dependent regulation through direct interaction