Diffuse large B cell lymphoma (DLBCL) is the most common form of blood cancer and is characterized by a striking degree of genetic and clinical heterogeneity. This heterogeneity poses a major barrier to understanding the genetic basis of the disease and its response to therapy. Here, we performed an integrative analysis of whole-exome sequencing and transcriptome sequencing in a cohort of 1,001 DLBCL patients to comprehensively define the landscape of 150 genetic drivers of the disease. We characterized the functional impact of these genes using an unbiased CRISPR screen of DLBCL cell lines to define oncogenes that promote cell growth. A prognostic model comprising these genetic alterations outperformed current established methods: cell of origin, the International Prognostic Index comprising clinical variables, and dual MYC and BCL2 expression. These results comprehensively define the genetic drivers and their functional roles in DLBCL to identify new therapeutic opportunities in the disease.

T cells are important for effective viral clearance, elimination of virus-infected cells and long-term disease protection. To examine the full-spectrum of CD8

Several clinical prognostic models for diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL) have been proposed, including the most commonly used International Prognostic Index (IPI), the National Comprehensive Cancer Network IPI (NCCN-IPI), and models incorporating beta-2 microglobulin (β2M). However, the role of β2M in DLBCL patients is not fully understood.

Despite advances in treatment, approximately 15% of patients with diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL) who achieve complete remission (CR) after first-line therapy will experience a relapse. However, there is no consensus on the optimal follow-up strategies for detecting relapse after achieving CR. This population-based study, based on the Danish Lymphoma Registry (LYFO), identified a total of 1634 patients diagnosed with DLBCL between 2010 and 2017, including 105 patients who achieved CR following first-line R-CHOP-like therapy and subsequently relapsed. The median follow-up time was 6 years (range 3-8 years). Most cases of relapse were symptomatic (83%), with B symptoms and peripheral lymphadenopathy being the most common. Asymptomatic relapses were identified through physical examination (1%), blood tests (3%), or imaging findings (13%). The proportion of relapses identified outside routine visits was 70%. Only 5% of scheduled routine visits led to a relapse diagnosis, whereas 74% of unscheduled visits initiated by the patient outside routine follow-up resulted in relapse detection. Our findings highlight that systematic, scheduled monitoring of patients in remission after first-line treatment contributes only modestly to the early detection of disease recurrence. Future studies should explore alternative methods of relapse surveillance rather than relying solely on pre-scheduled clinical follow-up.

Summary To understand the CD8 + T cell immunity related to viral protection and disease severity in COVID-19, we evaluated the complete SARS-CoV-2 genome (3141 MHC-I binding peptides) to identify immunogenic T cell epitopes, and determine the level of CD8 + T cell involvement using DNA-barcoded peptide-major histocompatibility complex (pMHC) multimers. COVID-19 patients showed strong T cell responses, with up to 25% of all CD8 + lymphocytes specific to SARS-CoV-2-derived immunodominant epitopes, derived from ORF1 (open reading frame 1), ORF3, and Nucleocapsid (N) protein. A strong signature of T cell activation was observed in COVID-19 patients, while no T cell activation was seen in the ‘non-exposed’ and ‘high exposure risk’ healthy donors. Interestingly, patients with severe disease displayed the largest T cell populations with a strong activation profile. These results will have important implications for understanding the T cell immunity to SARS-CoV-2 infection, and how T cell immunity might influence disease development.

Abstract Patients with hematological malignancies are prioritized for COVID-19 vaccine due to their high risk for severe SARS-CoV-2 infection related disease and mortality. To understand T cell immunity, its long-term persistence, and correlation with antibody response, we evaluated the BNT162b2 COVID-19 mRNA vaccine-specific immune response in chronic lymphocytic leukemia (CLL) and myeloid dysplastic syndrome (MDS) patients. Longitudinal analysis of CD8 + T cells using DNA-barcoded peptide-MHC multimers covering the full SARS-CoV-2 Spike-protein (415 peptides) showed vaccine-specific T cell activation and persistence of memory T cells up to six months post-vaccination. Surprisingly, a higher frequency of vaccine-induced antigen-specific CD8 + T cell was observed in the patient group compared to a healthy donor group. Furthermore, and importantly, immunization with the second booster dose significantly increased the frequency of antigen-specific CD8 + T cells as well as the total number of T cell specificities. Altogether 59 BNT162b2 vaccine-derived immunogenic epitopes were identified, of which 23 established long-term CD8 + T cell memory response with a strong immunodominance for NYNYLYRLF (HLA-A24:02) and YLQPRTFLL (HLA-A02:01) epitopes. In summary, we mapped the vaccine-induced antigen-specific CD8 + T cells and showed a booster-specific activation and enrichment of memory T cells that could be important for long-term disease protection in this patient group. Key Points COVID-19 mRNA vaccine induced an early and persistent activation of antigen-specific CD8 + T cells in this patient group. Vaccination with a booster dose is required to maintain vaccine-specific CD8 + T cells.