Abstract Findings from epidemiological studies suggest that breast cancer risk is influenced by parity in an age-dependent manner. However, human mammary tissue remodelling that takes place during pregnancy and lactation remain little understood due to the challenge of acquiring samples. Here, we present an approach to overcome this using single-cell RNA sequencing to examine viable primary mammary epithelial cells isolated from human milk compared to resting, non-lactating breast tissue. Thereby, we determined that separate to breast tissue, human milk largely contains epithelial cells belonging to the luminal lineage, as well as immune cells. Our data reveal the presence of two distinct secretory luminal cell clusters in milk which highly express luminal progenitor signatures akin to non-lactating breast tissue luminal cells. Taking advantage of the fact that both the resting and lactating mammary gland contain a luminal compartment, we focussed on comparing these transcriptomes and identified differences in mammary cell function and metabolism between these maturation states. These findings provide the basis to dissect human luminal differentiation and milk biosynthesis pathways that in the future, may be interrogated to determine how parity influences luminal cell metabolism and breast cancer risk.

In 2022-23 the world experienced the largest recorded mpox virus (MPXV) outbreak outside of endemic regions. Remarkably, cases of neurological manifestations were reported, some of which fatal. MPXV DNA and MPXV-specific IgM antibodies were detected in the cerebrospinal fluid of encephalitis-affected patients, suggesting neuroinvasive potential of MPXV. We explored the susceptibility of neural tissue to MPXV infection using human cerebral organoids (hCOs) exposed to a primary isolate belonging to clade IIb lineage. The virus efficiently replicates in hCOs as indicated by the exponential increase of infectious viral loads and the elevated frequency of MPXV-positive cells over time. Also, electron microscopy imaging revealed the presence of viral particles as well as perinuclear viral factories. We observed susceptibility of several cell lineages to the virus, including neural progenitor cells, neurons, and astrocytes. Furthermore, we detected the presence of viral antigens in neurites and in foci of grouped cells distributed throughout the tissue. In line with this, examining released and cell-associated MPXV titers, we observed significantly more cell-associated infectious virus, suggesting viral spread by cell-to-cell contact. While hCOs displayed no evident outer morphological changes upon infection, we detected the formation of varicosities in neurites, pointing to viral manipulation of axonal transport and neuronal injury. In accordance, the apoptosis marker cleaved caspase-3 was detected within neurite swellings. Our findings identify a mechanism potentially contributing to MPXV-mediated neuropathology that may have therapeutic implications.