Little is known about the climate of the scientific fieldwork setting as it relates to gendered experiences, sexual harassment, and sexual assault. We conducted an internet-based survey of field scientists (N = 666) to characterize these experiences. Codes of conduct and sexual harassment policies were not regularly encountered by respondents, while harassment and assault were commonly experienced by respondents during trainee career stages. Women trainees were the primary targets; their perpetrators were predominantly senior to them professionally within the research team. Male trainees were more often targeted by their peers at the research site. Few respondents were aware of mechanisms to report incidents; most who did report were unsatisfied with the outcome. These findings suggest that policies emphasizing safety, inclusivity, and collegiality have the potential to improve field experiences of a diversity of researchers, especially during early career stages. These include better awareness of mechanisms for direct and oblique reporting of harassment and assault and, the implementation of productive response mechanisms when such behaviors are reported. Principal investigators are particularly well positioned to influence workplace culture at their field sites.

ABSTRACT As the lining of the uterus and site of blastocyst implantation, the endometrium is a dynamic tissue that undergoes rapid cycles of growth, breakdown, and remodeling each menstrual cycle. Significant vascular remodeling is also driven by trophoblast cells that form the outer layer of the blastocyst. Trophoblast invasion and remodeling enhance blood flow to the embryo ahead of placentation. Insight into endometrial vascular remodeling and trophoblast invasion would provide key insights into endometrial physiology and cellular interactions critical for establishment of pregnancy. The objective for this study was to develop a tissue engineering platform to investigate processes of endometrial angiogenesis and trophoblast invasion in a 3D environment. We report adaptation of a methacrylamide-functionalized gelatin hydrogel that presents matrix stiffness in the range of the native tissue. Further, the hydrogel supports the formation of stable endometrial endothelial cell networks and attachment of a stratified endometrial epithelial cell layer, enables culture of a hormone-responsive stromal compartment, and provides the capacity to monitor the kinetics of trophoblast invasion. With these studies, we provide a series of techniques that will instruct researchers in the development of endometrial models of increasing complexity.

Abstract The endometrium undergoes rapid cycles of vascular growth, remodeling, and breakdown during the menstrual cycle and pregnancy. Decidualization is an endometrial differentiation process driven by steroidal sex hormones that is critical for blastocyst-uterine interfacing and blastocyst implantation. Certain pregnancy disorders may be linked to decidualization processes. However, much remains unknown regarding the role of decidualization and reciprocal trophoblast-endometrial interactions on endometrial angiogenesis and trophoblast invasion. Here, we report an artificial endometrial perivascular niche embedded in gelatin methacrylol hydrogels that displays morphological and functional patterns of decidualization. We show vessel complexity and soluble factor secretion are sensitive to decidualization and affect trophoblast motility. Importantly, we demonstrate the engineered perivascular niche can be combined with epithelial cultures to form a stratified endometrial model. This artificial perivascular niche provides a well-characterized platform to investigate dynamic changes in angiogenesis in response to pathological and physiological endometrial states. Teaser We describe an endometrial vessel model to understand endometrial vasculature in the menstrual cycle and pregnancy.

Abstract The endometrium undergoes rapid cycles of vascular growth, remodeling, and breakdown during the menstrual cycle and pregnancy. Decidualization is an endometrial differentiation process driven by steroidal sex hormones that is critical for blastocyst-uterine interfacing and blastocyst implantation. Certain pregnancy disorders may be linked to decidualization processes. However, much remains unknown regarding the role of decidualization and reciprocal trophoblast-endometrial interactions on endometrial angiogenesis and trophoblast invasion. Here, we report an engineered endometrial microvascular network embedded in gelatin hydrogels that displays morphological and functional patterns of decidualization. Vessel complexity and biomolecule secretion are sensitive to decidualization and affect trophoblast motility, but that signaling between endometrial and trophoblast cells was not bi-directional. Although endometrial microvascular network decidualization status influences trophoblast cells, trophoblast cells did not induce structural changes in the endometrial microvascular networks. These findings add to a growing literature that the endometrium has biological agency at the uterine-trophoblast interface during implantation. Finally, we form a stratified endometrial tri-culture model, combining engineered microvascular networks with epithelial cells. These endometrial microvascular networks provide a well-characterized platform to investigate dynamic changes in angiogenesis in response to pathological and physiological endometrial states.

Trophoblast cells play multiple critical roles in pregnancy, notably modulating blastocyst attachment to the endometrium as well as invading into and actively remodeling the endometrium to facilitate biotransport needs of the growing embryo. Despite the importance of trophoblast invasion for processes essential at early stages of pregnancy, much remains unknown regarding the balance of signaling molecules that may influence trophoblast invasion into the endometrium. The goal of this study was to use a three-dimensional trophoblast spheroid invasion assays to examine the effect of cues from the maternal-fetal interface on trophoblast invasion. We report use of a methacrylamide-functionalized gelatin (GelMA) hydrogel to support quantitative analysis of trophoblast outgrowth area and cell viability. We show this multidimensional model of trophoblast invasion can resolve quantifiable differences in outgrowth area and viability in the presence of a known invasion promoter, epidermal growth factor, and a known invasion inhibitor, transforming growth factor β1. We then investigate the sensitivity of trophoblast invasion to cortisol, a hormone associated with exogenous stressors. Together, this approach provides a toolset to investigate the coordinated action of physiological and pathophysiological processes on early stages of trophoblast invasion.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.