Abstract Extracellular vesicles (EVs), through their complex cargo, can reflect the state of their cell of origin and change the functions and phenotypes of other cells. These features indicate strong biomarker and therapeutic potential and have generated broad interest, as evidenced by the steady year‐on‐year increase in the numbers of scientific publications about EVs. Important advances have been made in EV metrology and in understanding and applying EV biology. However, hurdles remain to realising the potential of EVs in domains ranging from basic biology to clinical applications due to challenges in EV nomenclature, separation from non‐vesicular extracellular particles, characterisation and functional studies. To address the challenges and opportunities in this rapidly evolving field, the International Society for Extracellular Vesicles (ISEV) updates its ‘Minimal Information for Studies of Extracellular Vesicles’, which was first published in 2014 and then in 2018 as MISEV2014 and MISEV2018, respectively. The goal of the current document, MISEV2023, is to provide researchers with an updated snapshot of available approaches and their advantages and limitations for production, separation and characterisation of EVs from multiple sources, including cell culture, body fluids and solid tissues. In addition to presenting the latest state of the art in basic principles of EV research, this document also covers advanced techniques and approaches that are currently expanding the boundaries of the field. MISEV2023 also includes new sections on EV release and uptake and a brief discussion of in vivo approaches to study EVs. Compiling feedback from ISEV expert task forces and more than 1000 researchers, this document conveys the current state of EV research to facilitate robust scientific discoveries and move the field forward even more rapidly.

Parasitic diseases affect billions of people and are considered a major public health issue. Close to 400 species are estimated to parasitize humans, of which around 90 are responsible for great clinical burden and mortality rates. Unfortunately, they are largely neglected as they are mainly endemic to poor regions. Of relevance to this review, there is accumulating evidence of the release of extracellular vesicles (EVs) in parasitic diseases, acting both in parasite–parasite inter‐communication as well as in parasite–host interactions. EVs participate in the dissemination of the pathogen and play a role in the regulation of the host immune systems. Production of EVs from parasites or parasitized cells has been described for a number of parasitic infections. In this review, we provide the most relevant findings of the involvement of EVs in intercellular communication, modulation of immune responses, involvement in pathology, and their potential as new diagnostic tools and therapeutic agents in some of the major human parasitic pathogens.

ABSTRACT SARS-CoV-2 entry is mediated by binding of the spike protein (S) to the surface receptor ACE2 and subsequent priming by TMPRRS2 allowing membrane fusion. Here, we produced extracellular vesicles (EVs) exposing ACE2 and demonstrate that ACE2-EVs are efficient decoys for SARS-CoV-2 S protein-containing lentivirus. Reduction of infectivity positively correlates with the level of ACE2, is 500 to 1500 times more efficient than with soluble ACE2 and further enhanced by the inclusion of TMPRSS2.

Abstract Eukaryotic cells, including cancer cells, secrete highly heterogeneous populations of extracellular vesicles (EVs). EVs could have different subcellular origin, composition and functional properties, but tools to distinguish between EV subtypes are scarce. Here, we tagged CD63- or CD9-positive EVs secreted by triple negative breast cancer cells with Nanoluciferase enzyme, to set-up a miniaturized method to quantify secretion of these two EV subtypes directly in the supernatant of cells. We performed a cell-based high-content screening to identify clinically-approved drugs able to affect EV secretion. One of the identified hits is Homosalate, an anti-inflammatory drug found in sunscreens which robustly increased EVs’ release. Comparing EVs induced by Homosalate with those induced by Bafilomycin A1, we discovered that: 1) the two drugs act on EVs generated in distinct subcellular compartments and 2) EVs released upon treatment with Homosalate, but not with Bafilomycin A1, conferred anti-anoikis properties to another recipient tumor cell line. In conclusion, we identified a new drug modifying EV release and demonstrated that under influence of different drugs, triple negative breast cancer cells release EV subpopulations from different subcellular origins harboring distinct functional properties.

ABSTRACT Cells secrete membrane-enclosed extracellular vesicles (EVs) and non-vesicular nanoparticles (ENPs) that may play a role in intercellular communication. Tumor-derived EVs have been proposed either to induce immune priming of antigen presenting cells, or, to be immuno-suppressive agents promoting tumor immune escape. We suspect that such disparate functions are due to variable composition in EV subtypes and ENPs of the analyzed EV preparations. We aimed to exhaustively characterize the array of secreted EVs and ENPs of murine tumor cell lines. Unexpectedly, we identified virus-like particles (VLPs) from endogenous murine leukemia virus in preparations of EVs produced by tumor cells. We established a robust protocol to separate small (s)EVs from VLPs and ENPs. We compared their protein composition and analyzed their functional interaction with target dendritic cells (DCs). ENPs were poorly captured and did not affect DCs. sEVs specifically induced DC death. A mixed EV/VLP preparation was the most efficient to induce DC maturation and antigen presentation. Our results call for systematic re-evaluation of the respective proportions and functions of non-viral EVs and VLPs produced by tumors and their contribution to anti-tumor immune responses and to tumor progression.

ABSTRACT Cell-cell communication within the complex tumor microenvironment is critical to cancer progression. Tumor-derived extracellular vesicles (TD-EVs) are key players in this process. They can interact with immune cells and modulate their activity, either suppressing or activating the immune system. Understanding the interactions between TD-EVs and immune cells is essential for understanding immune modulation by cancer cells. Fluorescent labelling of TD-EVs is a method of choice to study such interaction. This work aims to determine the impact of EV labelling methods on the detection of EV interaction and capture by the different immune cell types within human Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMCs), analyzed by imaging flow cytometry and multicolor spectral flow cytometry. EVs released by the triple-negative breast carcinoma cell line MDA-MB-231 were labeled either with the lipophilic dye MemGlow-488 (MG-488), with Carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester (CFDA-SE), or through expression of a MyrPalm-superFolder GFP (sfGFP) that incorporates into EVs during their biogenesis using a genetically engineered cell line. Our results showed that these different labeling strategies, although analyzed with the same techniques, led to diverging results. While MG-488-labelled EVs incorporate in all cell types, CFSE-labelled EVs are restricted to a minor subset of cells and sfGFP-labelled EVs are mainly detected in CD14+ monocytes which are the main uptakers of EVs and other particles, regardless of the labeling method. Moreover, MG-488-labeled liposomes behaved similarly to MG-488 EVs, highlighting the predominant role of the labelling strategy on the visualization and analysis of TD-EVs uptake by immune cell types. Consequently, the use of different EV labeling methods has to be considered as they can provide complementary information on various types of EV-cell interaction and EV fate.