Avian influenza virus (AIV) subtype H9N2 has significantly threatened the poultry business in recent years by having become the predominant subtype in flocks of chickens, ducks, and pigeons. In addition, the public health aspects of H9N2 AIV pose a significant threat to humans. Early and rapid diagnosis of H9N2 AIV is therefore of great importance. In this study, a new method for the detection of H9N2 AIV based on fluorescence intensity was successfully established using CRISPR/Cas13a technology. The Cas13a protein was first expressed in a prokaryotic system and purified using nickel ion affinity chromatography, resulting in a high-purity Cas13a protein. The best RPA (recombinase polymerase amplification) primer pairs and crRNA were designed and screened, successfully constructing the detection of H9N2 AIV based on CRISPR/Cas13a technology. Optimal concentration of Cas13a and crRNA was determined to optimize the constructed assay. The sensitivity of the optimized detection system is excellent, with a minimum detection limit of 10° copies/μL and didn't react with other avian susceptible viruses, with excellent specificity. The detection method provides the basis for the field detection of the H9N2 AIV.

Chicken coccidiosis is a protozoan disease that leads to considerable economic losses in the poultry industry. Live oocyst vaccination is currently the most effective measure for the prevention of coccidiosis. However, it provides limited protection with several drawbacks, such as poor immunological protection and potential reversion to virulence. Therefore, the development of effective and safe vaccines against chicken coccidiosis is still urgently needed.

In maintaining organismal homeostasis, gut immunity plays a crucial role. The coordination between the microbiota and the immune system through bidirectional interactions regulates the impact of microorganisms on the host. Our research focused on understanding the relationship between substantial changes in jejunal intestinal flora and metabolites and intestinal immunity during porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) infection in piglets. We discovered that Lactobacillus rhamnosus GG (LGG) could effectively prevent PEDV infection in piglets. Further investigation revealed that LGG metabolites interact with type 3 innate lymphoid cells (ILC3) in the jejunum of piglets through the aryl hydrocarbon receptor (AhR). This interaction promotes the activation of ILC3 cells and the production of interleukin-22 (IL-22). Subsequently, IL-22 facilitates the proliferation of IPEC-J2 cells and activates the STAT3 signaling pathway, thereby preventing PEDV infection. Moreover, the AhR receptor exerts its influence on various cell types within organoids, including intestinal stem cells (ISCs), Paneth cells, and enterocytes, fostering their growth and development, suggesting a broad impact of AhR on intestinal health. In conclusion, our study demonstrates the ability of LGG to modulate intestinal immunity and effectively prevent PEDV infection in piglets. These findings highlight the potential application of LGG as a preventive measure against viral infections in livestock.

ABSTRACT E3 ubiquitin ligases are very important to regulate antiviral immunity during viral infection. Here, we discovered that Ankyrin repeat and SOCS box-containing protein 3 (ASB3), an E3 ligase, are upregulated in the presence of RNA viruses, particularly Influenza A virus (IAV). Notably, overexpression of ASB3 inhibits type I IFN (IFN-I) responses induced by Sendai virus (SeV) and H9N2, and ablation of ASB3 restores SeV and H9N2 infection-mediated transcription of IFN-β and its downstream interferon-stimulated genes (ISGs). Interestingly, animals lacking ASB3 showed a decreased susceptibility to H9N2 and PR8 infections. Mechanistically, ASB3 interacts with MAVS and directly mediates K48-linked polyubiquitination and degradation of MAVS at K297, thereby inhibiting the phosphorylation levels of TBK1 and IRF3, downregulating downstream antiviral signaling. These findings establish ASB3 as a critical negative regulator in controlling the activation of antiviral signaling and describe a novel function of ASB3 that has not been previously reported. IMPORTANCE IAV is a significant zoonotic pathogen that causes infections of the respiratory system. Hosts have evolved multiple strategies to defend against IAV infection. However, not all host proteins play an active defense role. In this study, we found that the E3 ligase ASB3 regulates antiviral immunity by manipulating MAVS stability. Briefly, overexpression of ASB3 degrades MAVS, thereby promoting viral replication. In contrast, ASB3 deletion restores MAVS expression, upregulating IFN-I responses. Additional research revealed that ASB3 mediates the K48-linked polyubiquitination of MAVS at K297, resulting in ASB3 being degraded via the ubiquitin-proteasome pathway. These findings reveal, for the first time, a novel mechanism by which ASB3 negatively regulates antiviral immunity and provides a potential target for anti-IAV drug development.

Soyasaponins, recognized for their anti-inflammatory and antioxidant effects, have not yet been fully explored for their role in combating enterotoxigenic

Abstract E3 ubiquitin ligase (E3) plays a vital role in regulating inflammatory responses by mediating ubiquitination. Previous studies have shown that ankyrin repeat and SOCS box-containing protein 3 (ASB3) is involved in immunomodulatory functions associated with cancer. However, the impact of ASB3 on the dynamic interplay of microbiota and inflammatory responses in inflammatory bowel disease (IBD) is unclear. Here we systematically identify the E3 ligase ASB3 as a facilitative regulator in the development and progression of IBD. ASB3 -/- mice are resistant to DSS-induced colitis. IκBα phosphorylation levels and production of proinflammatory factors IL-1β, IL-6, and TNF-α were reduced in colonic tissues of ASB3 -/- mice compared to WT mice. This colitis-resistant phenotype was suppressed after coprophagic microbial transfer and reversed after combined antibiotic clearance of the microbiota. Mechanistically, ASB3 specifically catalyzes K48-linked polyubiquitination of TRAF6 in IECs. In contrast, in ASB3-deficient organoids, the integrity of the TRAF6 protein is shielded, consequently decelerating the onset of intestinal inflammation. Taken together, Our findings demonstrates that ASB3 is associated with dysregulation of the colitis microbiota and promotes proinflammatory factors production by disrupting the TRAF6 stability. Strategies to limit the protein level of ASB3 in intestinal epithelial cells may help in the treatment of colitis.

Avian influenza virus (AIV) subtype H9N2 still poses a great threat to the poultry farming industry and public health worldwide, and the development of a new influenza vaccine that is safe and conservative and able to address influenza virus mutations is highly promising for application. HA2, the neck of the HA protein, and M2e, the extracellular N-terminal structural domain of the M2 protein, are conserved and effective protective antigens. In this study, the HA2 sequences were fused with three M2e copies (H9N2, H1N1 and H5N1) to the norovirus VP1 protein via the SpyTag-SpyCatcher platform to form self-assembled nanoparticles and display antigenic proteins on its surface, yielding pYL262. The chicken dendritic cells (DCs) targeting the nanobody phage-54 were then fused to HA2-3M2e to yield pYL327. Finally, a synthesized 20-repeat CpG adjuvant gene fragment was inserted into pYL327, resulting in the plasmid pYL331. All the constructed plasmids were then transformed into the sifA gene-deficient Salmonella vector χYL56 for oral immunization. The results showed that sifA-deficient Salmonella could efficiently increase antigen-specific mucosal sIgA antibody titers, especially in alveolar lavage samples, whereas the presence of the phage-54 nanobody could dramatically increase intracellular IFN-γ mRNA levels, indicating its ability to enhance the Th1-type immune response. Finally, the presence of the CpG adjuvant clearly increased T-cell proliferation and promoted DC activation, with elevated splenic TLR21 levels observed. Strikingly, after oral immunization with χYL56 (pYL331), chickens were protected against challenge with the G57 genotype H9N2 virus, which presented similar or even better levels of virus shedding and body weight gain compared with the commercial inactivated vaccine, providing a new option for controlling H9N2 virus infection in the future.

Abstract Pigs are the most suitable model to study various therapeutic strategies and drugs for human beings, while knowledge about tissue- and cell-type-specific transcriptomes and heterogeneity is poorly available. Here, we focused on the intestinal immunity of pigs. Through single-cell sequencing (scRNA-seq) and flow cytometry analysis of the types of immune cells in the jejunum of pigs, we found that innate lymphoid cells (ILCs) existed in the lamina propria lymphocytes (LPLs) of the jejunum. Then, through flow sorting of Live/Dead (L/D) - Lineage(LIN) - CD45 + cells and scRNA-seq, we found that ILCs in the porcine jejunum were mainly ILC3s, with a small number of ILC1s, ILC2s, and NK cells. Through a gene expression map, we found that ILCs coexpressed IL-7Rα, ID2, and other genes and differentially expressed RORC, GATA3, and other genes but did not express the CD3 gene. According to their gene expression profiles, ILC3s can be divided into four subgroups, and genes such as CXCL8, CXCL2, IL-22, IL-17, and NCR2 are differentially expressed. To further detect and identify ILC3s, we prepared RORC monoclonal antibodies and verified the classification of ILCs in the porcine jejunum subgroup and the expression of related hallmark genes at the protein level by flow cytometry. For systematically characterizing of ILCs in the porcine intestines, we combined our pig ILCs dataset with publicly available human and mice ILCs data and identified that the humans and pigs ILCs shared more common features than those mice ILCs in gene signatures and cell states. For the first time, our results showed in detail the gene expression of porcine jejunal ILCs, the subtype classification of ILCs, and the markers of various ILCs, which provides a basis for an in-depth exploration of porcine intestinal mucosal immunity. Abstract Figure Graphical abstract