Summary Resistance to endocrine therapies (ET) is common in estrogen receptor (ER) positive breast cancer and most relapsed patients die with ET-resistant disease. While genetic mutations provide explanations for some relapsed patients 1 , mechanisms of resistance remain undefined in many cases. Drug-induced epigenetic reprogramming provides possible routes to resistance 2 . By analysing histone H3 lysine 27 acetylation (H3K27ac) profiles in models of ET resistance, we discovered that selective ER down-regulators (SERDs) such as fulvestrant promote epigenetic activation of VGLL1 , a co-activator for TEAD transcription factors. We show that VGLL1 , acting via TEADs, promotes expression of genes that drive growth of fulvestrant-resistant breast cancer cells. Pharmacological disruption of VGLL1/TEAD4 interaction inhibits VGLL1/TEAD transcriptional programmes to block growth of the resistant cells and prevents growth. Among the VGLL1/TEAD-regulated genes, we identify EGFR , whereby VGLL1-directed EGFR upregulation sensitises fulvestrant-resistant breast cancer cells to EGFR inhibitors. Taken together, our findings identify VGLL1 as a transcriptional driver in ET resistance and advance new therapeutic possibilities for relapsed ER+ breast cancer patients.

Abstract Limited understanding of bladder cancer aetiopathology hampers progress in reducing incidence. BK polyomavirus (BKPyV) is a common childhood infection that can be reactivated in the adult kidney leading to viruria. Here we used a mitotically-quiescent, differentiated, normal human urothelial in vitro model to study BKPyV infection. BKPyV infection led to significantly elevated APOBEC3A and APOBEC3B protein, increased deaminase activity and greater numbers of apurinic/apyrimidinic sites in the host urothelial genome. BKPyV Large T antigen (LT-Ag) stimulated re-entry into the cell cycle via inhibition of Retinoblastoma protein and activation of EZH2, E2F1 and FOXM1, which combined to push urothelial cells from G0 into an arrested G2 cell cycle state. The single-stranded DNA displacement loops formed during BKPyV-infection, provide a substrate for APOBEC3 enzymes where they interacted with LT-Ag. These results support reactivated BKPyV infections in adults as a risk factor for bladder cancer in immune-insufficient populations, including transplant patients and the elderly.

ABSTRACT Immunotherapy is increasingly viewed as treatment of choice for lung cancer, however, clinical responses to immune checkpoint blockade remain highly unpredictable and are largely transient. A deeper mechanistic understanding of the dynamics of tumour:immune interactions is needed to drive rational development of improved treatment strategies. Progress is hampered by a paucity of autochthonous model systems in which to interrogate the 2-way interactions of immune responses to evolving tumours and vice-versa. Specifically, commonly used genetically engineered mouse models typically lack the genetic diversity needed to drive an adaptive immune response. APOBEC mutagenesis signatures are prominent in lung cancer and APOBEC activity is predicted to drive immune visibility through Cytidine deaminase activity, coupled with inaccurate DNA-repair responses. We therefore generated a CRE-inducible APOBEC3B allele, interbred with multiple oncogenic drivers of lung adenocarcinoma, and used the resulting mice to investigate the response to PD1 blockade at single cell resolution. SIGNIFICANCE Using our novel immune-visible model of KRas-driven autochthonous lung adenocarcinoma, we uncovered a surprising increase in tumour-cell expression of EGFR/ERBB ligands following treatment with α-PD1 and present evidence that transient ERBB blockade can restore immune surveillance in KRas mutant LuAd and combine effectively with immune checkpoint blockade.

Abstract The seven human APOBEC3 (hA3) genes encode polynucleotide cytidine deaminases that play vital roles in restricting replication of viruses and retrotransposons. However, off-target A3 deamination of the cellular genome is a major source of somatic mutations in human cancer. The ability to study A3 biology in vivo is hindered by the fact that the solitary murine Apobec3 gene (mA3) encodes a cytoplasmic enzyme, with no apparent mutagenic activity. Transgenic expression of individual hA3 genes in mice has helped to confirm their oncogenic potential but important questions including which hA3 genes are active in different tissue contexts and how they function in concert when under control of their cognate promoters cannot be addressed using these models. Here we describe humanization of the mouse mA3 locus by integration of a modified BAC clone encompassing the entire 7-gene hA3 locus from human chromosome 22 replacing mA3 on mouse chromosome 15. APOBEC3 mice are viable and fertile and hA3 gene expression in cells and tissues correlates strongly with expression in corresponding human cells and tissues, indicating human-like regulation of hA3 gene expression in the mice. Splenocytes from this line display a functional human A3 response to Friend Murine Leukaemia Virus (F-MLV) infection. We propose that the Hs-APOBEC3 mouse will uniquely model the function of the complete hA3 locus in a living organism and that it will serve as a useful background upon which to model human cancer, as well as assisting drug discovery efforts.