Abstract Acute myeloid leukemia (AML) is a highly aggressive hematopoietic malignancy, defined by a series of genetic and epigenetic alterations, which result in deregulation of transcriptional networks. One understudied but important source of transcriptional regulators are transposable elements (TEs), which are widespread throughout the human genome. Aberrant usage of these sequences could therefore contribute to oncogenic transcriptional circuits. However, the regulatory influence of TEs and their links to disease pathogenesis remain unexplored in AML. Using epigenomic data from AML primary samples and leukemia cell lines, we identified six endogenous retrovirus (ERV) families with AML-associated enhancer chromatin signatures that are enriched in binding of key regulators of hematopoiesis and AML pathogenesis. Using both CRISPR-mediated locus-specific genetic editing and simultaneous epigenetic silencing of multiple ERVs, we demonstrate that ERV deregulation directly alters the expression of adjacent genes in AML. Strikingly, deletion or epigenetic silencing of an ERV-derived enhancer suppressed cell growth by inducing apoptosis in leukemia cell lines. Our work reveals that ERVs are a previously unappreciated source of AML enhancers that have the potential to play key roles in leukemogenesis. We suggest that ERV activation provides an additional layer of gene regulation in AML that may be exploited by cancer cells to help drive tumour heterogeneity and evolution.

ABSTRACT Myelodysplastic syndromes (MDS) are hematopoietic stem cell (HSC) malignancies characterized by ineffective hematopoiesis, with increased incidence in elderly individuals. In this work, we analyzed the transcriptome of human HSCs purified from young and elderly healthy donors, as well as MDS patients, identifying transcriptional alterations following eight different patterns of expression. While aging-associated lesions seemed to predispose HSCs to myeloid transformation, disease-specific alterations may trigger MDS development. Among MDS-specific lesions, we detected the upregulation of the transcription factor DDIT3 . Overexpression of DDIT3 in human healthy HSCs induced an MDS-like transcriptional state, and a delay in erythropoiesis. Such effect was associated with downregulation of transcription factors required for normal erythropoiesis, and with a failure in the activation of their transcriptional programs. Moreover, DDIT3 knockdown in CD34 + cells from MDS patients with anemia was able to restore erythropoiesis. These results identify DDIT3 as a driver of dyserythropoiesis, and a potential therapeutic target to restore the inefficient erythropoiesis characterizing MDS patients. STATEMENT OF SIGNIFICANCE This study defines how human aging and MDS development are characterized by transcriptional alterations in HSCs that follow different patterns, some of which may contribute to myeloid transformation. Among them, we demonstrate how MDS-specific upregulation of DDIT3 in HSCs induces dyserythropoiesis, while its knockdown in HSPCs from MDS patients restores proper erythroid differentiation.

Abstract Identification of specific and therapeutically actionable vulnerabilities in acute myeloid leukaemia (AML) is needed to improve patients’ outcome. These features should be ideally present in many patients independently of mutational background. Here we identify de novo fatty acid (FA) desaturation, specifically stearoyl-CoA desaturase (SCD) inhibition, as a therapeutic vulnerability across multiple AML models in vitro and in vivo . We use the novel clinical grade SCD inhibitor SSI-4 to show that SCD inhibition induces AML cell death via pleiotropic effects, and sensitivity is based on their dependency on FA desaturation regardless of mutational profile. SSI-4 efficacy is enhanced by driving FA biosynthesis in vitro while stroma confers protective effects that extend to in vivo models. SCD inhibition increases DNA damage and its combination with standard DNA damage-inducing chemotherapy prolongs survival in aggressive murine AML models. Our work supports developing FA desaturase inhibitors in AML while stressing the importance of identifying predictive biomarkers of response and biologically validated combination therapies to realize their therapeutic potential. One Sentence Summary SCD inhibition is toxic to AML cells with high rates of fatty acid desaturation and in combination with chemotherapy prolongs survival in murine AML models.

ABSTRACT Acute myeloid leukaemia (AML) patients harbouring certain chromosome abnormalities have particularly adverse prognosis. For these patients, targeted therapies have not yet made a significant clinical impact. To understand the molecular landscape of poor prognosis AML we profiled 74 patients from two different centres (in UK and Finland) at the proteomic, phosphoproteomic and drug response phenotypic levels. These data were complemented with transcriptomics analysis for 39 cases. Data integration highlighted a phosphoproteomics signature that define two biologically distinct groups of KMT2A rearranged leukaemia, which we term MLLGA and MLLGB. MLLGA presented increased DOT1L phosphorylation, HOXA gene expression, CDK1 activity and phosphorylation of proteins involved in RNA metabolism, replication and DNA damage when compared to MLLGB and no KMT2A rearranged samples. MLLGA was particularly sensitive to 15 compounds including genotoxic drugs and inhibitors of mitotic kinases and inosine-5-monosphosphate dehydrogenase (IMPDH) relative to other cases. Intermediate-risk KMT2A-MLLT3 cases were mainly represented in a third group closer to MLLGA than to MLLGB. The expression of IMPDH2 and multiple nucleolar proteins was higher in MLLGA and correlated with the response to IMPDH inhibition in KMT2A rearranged leukaemia, suggesting a role of the nucleolar activity in sensitivity to treatment. In summary, our multilayer molecular profiling of AML with poor prognosis and KMT2A-MLLT3 karyotypes identified a phosphoproteomics signature that defines two biologically and phenotypically distinct groups of KMT2A rearranged leukaemia. These data provide a rationale for the potential development of specific therapies for AML patients characterised by the MLLGA phosphoproteomics signature identified in this study.

Abstract Acute myeloid leukemia (AML) is an aggressive hematological disorder comprising a hierarchy of quiescent leukemic stem cells (LSCs) and proliferating blasts with limited self-renewal ability. AML has a dismal prognosis, with extremely low two-year survival rates in the poorest cytogenetic risk patients, primarily due to the failure of intensive chemotherapy protocols unable to deplete LSCs, which reconstitute the disease in vivo , and the significant toxicity towards healthy hematopoietic cells. Whilst much work has been done to identify genetic and epigenetic vulnerabilities in AML LSCs, little is known about protein dynamics and the role of protein degradation in drug resistance and relapse. Here, using a highly specific inhibitor of the SCF SKP2-CKS1 complex, we report a dual role for CKS1-dependent protein degradation in reducing AML blasts in vivo , and importantly depleting LSCs. Whilst many AML LSC targeted therapies show significant toxicity to healthy hematopoiesis, inhibition of CKS1-dependent protein degradation has the opposite effect, protecting normal hematopoietic cells from chemotherapeutic toxicity. Together these findings demonstrate CKS1-dependent proteostasis is key for normal and malignant hematopoiesis. Significance CKS1-dependent protein degradation is a specific vulnerability in AML LSCs. Specific inhibition of SCF SKP2-CKS1 is lethal to CKS1B high AML blasts and all AML LSCs. Normal hematopoiesis is protected from chemotherapeutic toxicity by inhibition of CKS1-dependent protein degradation, substantiating a dual role for CKS1-dependent protein degradation in clinical treatment of AML.

Abstract Non-coding mutations (NCMs) that perturb the function of cis -regulatory elements (CRE, enhancers) contribute to cancer. Due to the vast search space, mutation abundance and indirect activity of non-coding sequences, it is challenging to identify which somatic NCMs are contributing to tumour development and progression. Here, we focus our investigation on the somatic NCMs that are enriched at enhancers from 659 pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) tumours. We identify cis -regulatory NCMs within PDAC-specific enhancers derived from high and low-grade PDAC cell lines and patient derived organoids using two independent computational approaches. Five such CREs enriched for PDAC associated NCMs are also frequently mutated in other common solid tumours. Functional validation using STARR-seq reporter assays enables the prioritisation of 43 NCMs (7.3%) from a pool of 587 NCMs with 6,082 oligos, that significantly alter reporter enhancer activity compared to wild-type sequences. CRISPRi perturbation of an enhancer cluster harbouring NCMs over long non-coding RNA gene MIR100HG , which hosts a microRNA cluster (mir100-let7a-2-125b-1), leads to the downregulation of MIR100HG accompanied by a significant reduction in the TGF-β pathway (known to induce MIR100HG ) and other PDAC critical pathways, including KRAS, p53, MTOR and TNF α signalling. Collectively, we have reported here cis -regulatory NCMs in PDAC proximal to many cancer-relevant genes, and our integrated approach paves way to explore CRE-associated NCMs in other human cancer genomes.

ABSTRACT The DExD/H-box RNA helicase DHX34 is a Nonsense-mediated decay (NMD) factor that together with core NMD factors co-regulates NMD targets in nematodes and in vertebrates. Here, we show that DHX34 is also associated with the human spliceosomal catalytic C complex. Mapping of DHX34 endogenous binding sites using Cross-Linking Immunoprecipitation (CLIP) revealed that DHX34 is preferentially associated with pre-mRNAs and locates at exon-intron boundaries. Accordingly, we observed that DHX34 regulates a large number of alternative splicing (AS) events in mammalian cells in culture, establishing a dual role for DHX34 in both NMD and pre-mRNA splicing. We previously showed that germline DHX34 mutations associated to familial Myelodysplasia (MDS)/Acute Myeloid Leukemia (AML) predisposition abrogate its activity in NMD. Interestingly, we observe now that DHX34 regulates the splicing of pre-mRNAs that have been linked to AML/MDS predisposition. This is consistent with silencing experiments in hematopoietic stem/progenitor cells (HSPCs) showing that loss of DHX34 results in differentiation blockade of both erythroid and myeloid lineages, which is a hallmark of AML development. Altogether, these data unveil new cellular functions of DHX34 and suggests that alterations in the levels and/or activity of DHX34 could contribute to human disease.