Occasionally, cells must adapt to an inimical growth conditions like amino acid starvation (AAS) by downregulating protein synthesis. A class of transcripts containing 5’terminal oligopyrimidine (5’TOP) motif encodes translation-related proteins such as ribosomal proteins (RPs) and elongation factors, and therefore, their translation is severely repressed during AAS to conserve energy[1][1]. The RNA-binding protein LARP1 transduces amino acid signaling to TOP gene expression by controlling translation and stability of TOP mRNAs[2][2]-[6][3]. When released from AAS, translation machineries in turn have to be restored, however, the underlying mechanism of such re-adaptation is largely unknown. Here we show that LARP1 preserves TOP mRNAs in a long polyadenylated state during long-term AAS. We found that TOP mRNAs become highly polyadenylated when cells are in AAS or treated with the mTOR (mechanistic target of rapamycin) inhibitor Torin1. Importantly, depletion of LARP1 completely abrogated the polyadenylation of TOP mRNAs. Comprehensive analysis of poly(A) tail length using the Nanopore direct RNA sequencing revealed that TOP mRNAs are selectively polyadenylated under mTOR inhibition. Since a long poly(A) tail confers increased stability and polysome formation of TOP mRNAs, we predict that LARP1-dependent preservation of TOP mRNAs enables rapid translational resumption after the release from AAS. [1]: #ref-1 [2]: #ref-2 [3]: #ref-6

Abstract We examined the anti-severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) spike protein IgG antibody and neutralizing antibody titers and cellular immunity in 73 uninfected recipients and 17 uninfected healthy controls who received three doses of a coronavirus 2019 mRNA vaccine. Neutralizing antibody titers were evaluated using GFP-carrying recombinant SARS-CoV-2 with spike protein of B.1.1, omicron BA.1, or BA.5. For cellular immunity, peripheral blood mononuclear cells were stimulated with peptides corresponding to spike protein antigens of B.1.1, BA.1, and BA.5; spike-specific CD4/CD8 memory T cells were evaluated using intracellular cytokine staining. The median IgG antibody titers were 7.8 AU/mL in recipients and 143.0 AU/mL in healthy controls (p < 0.0001). Neutralizing antibody titers against all three viral variants were significantly lower in recipients (p < 0.0001). The number of spike-specific CD8 + memory T cells significantly decreased in recipients (p < 0.0001). Twenty recipients and seven healthy controls additionally received a bivalent omicron-containing booster vaccine, and IgG antibody and neutralizing antibody titers increased in both groups; however, the increase was significantly lower in recipients. Recipients did not gain sufficient immunity with a third dose of vaccine, suggesting a need to explore methods other than vaccines.

Abstract Although the mRNA SARS-CoV-2 vaccine has improved the mortality rate in the general population, its efficacy against rapidly mutating virus strains, especially in kidney transplant recipients, remains unclear. We examined the anti-SARS-CoV-2 spike protein IgG antibody and neutralizing antibody titers and cellular immunity against B.1.1, BA.1, and BA.5 antigens in 73 uninfected kidney recipients and 16 uninfected healthy controls who received three doses of an mRNA SARS-CoV-2 vaccine. The IgG antibody titers were significantly lower in recipients than in healthy controls. Similarly, neutralizing antibody titers against three viral variants were significantly lower in recipients. When the virus was mutated, the neutralizing antibody titers decreased significantly in both groups. In cellular immunity analysis, the number of spike-specific CD8 + non-naïve T cells against three variants significantly decreased in recipients. Conversely, the frequency of spike-specific Th2 CD4 + T-cells in recipients was higher than that in healthy controls. Nineteen recipients and six healthy controls also received a bivalent omicron-containing booster vaccine, leading to increase IgG and neutralizing antibody titers in both groups. After that, eleven recipients and five healthy controls received XBB.1.5 monovalent vaccines, increasing the neutralizing antibody titers against not only XBB.1.5, but also EG.5.1 and BA.2.86 antigens in kidney recipients. Although kidney recipients did not gain sufficient immunity against Omicron BA.5 with the third dose of vaccine, humoral response against mutant SARS-CoV-2 lineages significantly increased after bivalent Omicron-containing booster vaccine and the XBB.1.5 monovalent vaccine. Therefore, it is important for kidney recipients to continue to administer updated vaccines.

ABSTRACT The attack and defense of infected cells and cytotoxic CD8 T cells occur in germinal centers in lymphoid tissue in chronic persistent HIV/SIV infection. Latently infected cells, the therapeutic target of HIV infection, accumulate in follicular helper T (Tfh) cells in lymphoid tissue; the impact of HIV-specific follicular CD8 (fCD8) T cells in lymphoid tissue on the latently infected cells remains unknown. We infected 15 cynomolgus macaques with SIVmac239 and examined the contribution of SIV-Gag-specific fCD8 T cells, defined by activation-induced markers (AIMs), to SIV-infected cells. Eight out of the 15 infected macaques served as progressors; a chronic phase combination antiretroviral therapy (cART) model was established for the eight macaques (progressors) with chronic persistent infection status, wherein cART was started in the chronic phase and discontinued after 27 weeks. Seven macaques that naturally controlled the viremia served as natural controllers. The frequency of SIV-Gag-specific fCD8 T cells was inversely correlated with the amount of cell-associated SIV- gag RNA in the Tfh only under cART or in the controllers but not in untreated progressors. scRNA-seq of SIV-Gag-specific fCD8 T cells in various conditions revealed that the gene expression pattern of SIV-Gag-specific fCD8 T cells in the controllers was closer to that of those under cART than the untreated progressors. Comparing the SIV-Gag-specific fCD8 T cells of those under cART to the controllers revealed their more exhausted and immunosenescent nature under cART. Improving the HIV/SIV-specific fCD8 T cells under cART by targeting those pathways might contribute to the development of potential curative strategies. IMPORTANCE We infected cynomolgus macaques with SIVmac239 to establish an SIV-chronically infected cART model. We performed an in-depth characterization of Tfh and fCD8 T cells in three conditions—chronic stage of untreated, cART-treated, and natural controller cynomolgus macaques—by combining tissue section analysis and single-cell analyses of sorted cells. We revealed the inverse relationship between Tfh infection and SIV-Gag-specific fCD8 T cell frequencies as observed in HIV-infected individuals, thereby establishing the cynomolgus macaque as a relevant animal model to study the determinants of HIV/SIV persistence in lymphoid tissue. Additionally, scRNA-seq analysis of SIV-Gag-specific fCD8 T cells revealed an enrichment of exhausted or senescent transcriptomic signatures under cART. These data will provide the basic insights into virus-host CD8 T cell interactions, particularly within the follicular region, during latent HIV infection under ART.