Abstract Summary NanoCLUST is an analysis pipeline for classification of amplicon-based full-length 16S rRNA nanopore reads. It is characterized by an unsupervised read clustering step, based on Uniform Manifold Approximation and Projection (UMAP), followed by the construction of a polished read and subsequent Blast classification. Here we demonstrate that NanoCLUST performs better than other state-of-the-art software in the characterization of two commercial mock communities, enabling accurate bacterial identification and abundance profile estimation at species level resolution. Availability and implementation Source code, test data and documentation of NanoCLUST is freely available at https://github.com/genomicsITER/NanoCLUST under MIT License. Contact cflores@ull.edu.es

Inherited deficiency of the RNA lariat–debranching enzyme 1 (DBR1) is a rare etiology of brainstem viral encephalitis. The cellular basis of disease and the range of viral predisposition are unclear. We report inherited DBR1 deficiency in a 14-year-old boy who suffered from isolated SARS-CoV-2 brainstem encephalitis. The patient is homozygous for a previously reported hypomorphic and pathogenic DBR1 variant (I120T). Consistently, DBR1 I120T/I120T fibroblasts from affected individuals from this and another unrelated kindred have similarly low levels of DBR1 protein and high levels of RNA lariats. DBR1 I120T/I120T human pluripotent stem cell (hPSC)–derived hindbrain neurons are highly susceptible to SARS-CoV-2 infection. Exogenous WT DBR1 expression in DBR1 I120T/I120T fibroblasts and hindbrain neurons rescued the RNA lariat accumulation phenotype. Moreover, expression of exogenous RNA lariats, mimicking DBR1 deficiency, increased the susceptibility of WT hindbrain neurons to SARS-CoV-2 infection. Inborn errors of DBR1 impair hindbrain neuron–intrinsic antiviral immunity, predisposing to viral infections of the brainstem, including that by SARS-CoV-2.

Blood is arguably the most important bodily fluid and its analysis provides crucial health status information. A first routine measure to narrow down diagnosis in clinical practice is the differential blood count, determining the frequency of all major blood cells. What is lacking to advance initial blood diagnostics is an unbiased and quick functional assessment of blood that can narrow down the diagnosis and generate specific hypotheses. To address this need, we introduce the continuous, cell-by-cell morpho-rheological (MORE) analysis of whole blood, without labeling, enrichment or separation, at rates of 1,000 cells/sec. In a drop of blood we can identify all major blood cells and characterize their pathological changes in several disease conditions in vitro and in patient samples. This approach takes previous results of mechanical studies on specifically isolated blood cells to the level of application directly in whole blood and adds a functional dimension to conventional blood analysis.