TF
Tomasz Furmanek
Author with expertise in Importance and Conservation of Freshwater Biodiversity
Achievements
Open Access Advocate
Cited Author
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
7
(100% Open Access)
Cited by:
204
h-index:
23
/
i10-index:
42
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

The vgll3 Locus Controls Age at Maturity in Wild and Domesticated Atlantic Salmon (Salmo salar L.) Males

Fernando Ayllón et al.Nov 9, 2015
Wild and domesticated Atlantic salmon males display large variation for sea age at sexual maturation, which varies between 1–5 years. Previous studies have uncovered a genetic predisposition for variation of age at maturity with moderate heritability, thus suggesting a polygenic or complex nature of this trait. The aim of this study was to identify associated genetic loci, genes and ultimately specific sequence variants conferring sea age at maturity in salmon. We performed a genome wide association study (GWAS) using a pool sequencing approach (20 individuals per river and phenotype) of male salmon returning to rivers as sexually mature either after one sea winter (2009) or three sea winters (2011) in six rivers in Norway. The study revealed one major selective sweep, which covered 76 significant SNPs in which 74 were found in a 370 kb region of chromosome 25. Genotyping other smolt year classes of wild and domesticated salmon confirmed this finding. Genotyping domesticated fish narrowed the haplotype region to four SNPs covering 2386 bp, containing the vgll3 gene, including two missense mutations explaining 33–36% phenotypic variation. A single locus was found to have a highly significant role in governing sea age at maturation in this species. The SNPs identified may be both used as markers to guide breeding for late maturity in salmon aquaculture and in monitoring programs of wild salmon. Interestingly, a SNP in proximity of the VGLL3 gene in humans (Homo sapiens), has previously been linked to age at puberty suggesting a conserved mechanism for timing of puberty in vertebrates.
0
Citation192
0
Save
0

Thevgll3locus controls age at maturity in wild and domesticated Atlantic salmon (Salmo salarL.) males

Fernando Ayllón et al.Aug 17, 2015
Wild and domesticated Atlantic salmon males display large variation for sea age at sexual maturation, which varies between 1-5 years. Previous studies have uncovered a genetic predisposition for age at maturity with moderate heritability, thus suggesting a polygenic or complex nature of this trait. The aim of this study was to identify associated genetic loci, genes and ultimately specific sequence variants conferring sea age at maturity in salmon. We performed a GWAS using a pool sequencing approach (20 individuals per river and trait) of salmon returning to rivers as sexually mature either after one sea winter (2009) or three sea winters (2011) in six rivers in Norway. The study revealed one major selective sweep, which covered 76 significant SNP in which 74 were found in a 370 kb region of chromosome 25. Genotyping other smolt year classes of wild salmon and domesticated salmon confirmed this finding. Genotyping domesticated fish narrowed the haplotype region to four SNPs covering 2386 bp, containing the vgll3 gene, including two missense mutations explaining 33-36% phenotypic variation. This study demonstrates a single locus playing a highly significant role in governing sea age at maturation in this species. The SNPs identified may be both used as markers to guide breeding for late maturity in salmon aquaculture and in monitoring programs of wild salmon. Interestingly, a SNP in proximity of the VGLL3 gene in human ( Homo sapiens ), has previously been linked to age at puberty suggesting a conserved mechanism for timing of puberty in vertebrates.
0
Citation6
0
Save
4

ReCodLiver0.9: Overcoming challenges in genome-scale metabolic reconstruction of a non-model species

Eileen Hanna et al.Jun 24, 2020
Abstract The availability of genome sequences, annotations and knowledge of the biochemistry underlying metabolic transformations has led to the generation of metabolic network reconstructions for a wide range of organisms in bacteria, archaea, and eukaryotes. When modeled using mathematical representations, a reconstruction can simulate underlying genotype-phenotype relationships. Accordingly, genome-scale models (GEMs) can be used to predict the response of organisms to genetic and environmental variations. A bottom-up reconstruction procedure typically starts by generating a draft model from existing annotation data on a target organism. For model species, this part of the process can be straightforward, due to the abundant organism-specific biochemical data. However, the process becomes complicated for non-model less-annotated species. In this paper, we present a draft liver reconstruction, ReCodLiver0.9, of Atlantic cod ( Gadus morhua ), a non-model teleost fish, as a practicable guide for cases with comparably few resources. Although the reconstruction is considered a draft version, we show that it already has utility in elucidating metabolic response mechanisms to environmental toxicants by mapping gene expression data of exposure experiments to the resulting model. Author summary Genome-scale metabolic models (GEMs) are constructed based upon reconstructed networks that are carried out by an organism. The underlying biochemical knowledge in such networks can be transformed into mathematical models that could serve as a platform to answer biological questions. The availability of high-throughput biological data, including genomics, proteomics, and metabolomics data, supports the generation of such models for a large number of organisms. Nevertheless, challenges arise for non-model species which are typically less annotated. In this paper, we discuss these challenges and possible solutions in the context of generation of a draft liver reconstruction of Atlantic cod ( Gadus morhua ). We also show how experimental data, here gene expression data, can be mapped to the resulting model to understand the metabolic response of cod liver to environmental toxicants.
4
Citation1
0
Save
3

Molecular mechanisms involved in Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) egg quality: impairments at transcription and protein folding levels induce inefficient protein and energy homeostasis during early development

Özlem Yılmaz et al.Feb 2, 2022
ABSTRACT Background Reproductive success and normal development in all animals are dependent on egg quality and developmental competence of the produced embryo. This study employed tandem mass tags labeling based liquid chromatography tandem mass spectrometry for egg proteomic profiling to investigate differences in the global proteome of good versus poor quality Atlantic halibut eggs at 1-cell stage post fertilization. Results A total of 115 proteins were found to be differentially abundant between good and poor quality eggs. Frequency distribution of these proteins revealed higher protein folding activity in good quality eggs in comparison to higher transcription and protein degradation activities in poor quality eggs ( p < 0.05). Poor quality halibut eggs were significantly enriched with additional proteins related to mitochondrial structure and biogenesis ( p < 0.05). The differential abundance of a selection of proteins was first confirmed at gene expression level using a transcriptomic approach followed by a targeted proteomic approach (parallel reaction monitoring based mass spectrometry) in biological samples obtained from two consecutive reproductive seasons. The findings of global proteome profiling, together with the validation of differential abundance of targeted proteins and their related genes, suggest impairments in protein and energy homeostasis which might be related to unfolded protein response and mitochondrial stress in poor quality eggs. Additional transmission electron microscopy studies were taken to assess potential differences in abundance and morphological integrity of mitochondria between good and poor quality eggs. Observations reveal poor quality eggs to contain significantly higher number of mitochondria with higher number of cristae. These mitochondria, however, are significantly smaller and have a more irregular shape than those found in high-quality eggs. Therewithal difference in mtDNA levels represented by mt-nd5 and mt-atp6 genomic DNA abundance in this study, were found to be not statistically significant ( p > 0.05) between good and bad quality eggs at both 1 hpf and 24 hpf stages. Conclusion Overall evidence from this study indicate that poor quality eggs undergo impairments at both transcription and translation level leading to endoplasmic reticulum and mitochondrial deficiencies. Additional research may be required to expediate the details and the potential of these impairments occurring in different species. Nonetheless, this study will pave the way for future research and will help in acceleration of recent advances in the field of embryonic developmental competence of living organisms.
3
Citation1
0
Save