Abstract We have developed periscope, a tool for the detection and quantification of sub-genomic RNA (sgRNA) in SARS-CoV-2 genomic sequence data. The translation of the SARS-CoV-2 RNA genome for most open reading frames (ORFs) occurs via RNA intermediates termed “sub-genomic RNAs”. sgRNAs are produced through discontinuous transcription which relies on homology between transcription regulatory sequences (TRS-B) upstream of the ORF start codons and that of the TRS-L which is located in the 5’ UTR. TRS-L is immediately preceded by a leader sequence. This leader sequence is therefore found at the 5’ end of all sgRNA. We applied periscope to 1,155 SARS-CoV-2 genomes from Sheffield, UK and validated our findings using orthogonal datasets and in vitro cell systems. Using a simple local alignment to detect reads which contain the leader sequence we were able to identify and quantify reads arising from canonical and non-canonical sgRNA. We were able to detect all canonical sgRNAs at expected abundances, with the exception of ORF10. A number of recurrent non-canonical sgRNAs are detected. We show that the results are reproducible using technical replicates and determine the optimum number of reads for sgRNA analysis. In VeroE6 ACE2+/− cell lines, periscope can detect the changes in the kinetics of sgRNA in orthogonal sequencing datasets. Finally, variants found in genomic RNA are transmitted to sgRNAs with high fidelity in most cases. This tool can be applied to all sequenced COVID-19 samples worldwide to provide comprehensive analysis of SARS-CoV-2 sgRNA.

Abstract Plasmids play an important role in bacterial evolution by transferring niche adaptive functional genes between lineages, thus driving genomic diversification. Bacterial genomes commonly contain multiple, coexisting plasmid replicons (i.e., plasmid coinfection), which could fuel adaptation by increasing the range of gene functions available to selection and allowing their recombination. However, plasmid coinfection is difficult to explain because the acquisition of plasmids typically incurs high fitness costs for the host cell. Here, we show that plasmid coinfection was stably maintained without positive selection for plasmid-encoded gene functions and was associated with compensatory evolution to reduce fitness costs. By contrast, with positive selection, plasmid coinfection was unstable despite compensatory evolution. Positive selection discriminated between differential fitness benefits of functionally redundant plasmid replicons, retaining only the more beneficial plasmid. These data suggest that while the efficiency of negative selection against plasmid fitness costs declines over time due to compensatory evolution, positive selection to maximise plasmid-derived fitness benefits remains efficient. Our findings help to explain the forces structuring bacterial genomes: Coexistence of multiple plasmids in a genome is likely to require either rare positive selection in nature or non-redundancy of accessory gene functions among coinfecting plasmids.

Abstract By transferring ecologically important traits between species, plasmids drive genomic divergence and evolutionary innovation in their bacterial hosts. Bacterial communities are often diverse and contain multiple coexisting plasmids, but the dynamics of plasmids in multispecies communities are poorly understood. Here, we show, using experimental multispecies communities containing two plasmids, that bacterial diversity limits the horizontal transmission of plasmids due to ‘the dilution effect’; an epidemiological phenomenon whereby living alongside less proficient host species reduces the expected infection risk for a focal host species. In addition, plasmid horizontal transmission was also affected by plasmid diversity, such that the rate of plasmid conjugation was reduced from coinfected host cells carrying both plasmids. In diverse microbial communities, plasmid spread may be limited by the dilution effect and plasmid-plasmid interactions reducing the rate of horizontal transmission.

Hydrogen sulfide, a gas classically considered as a by-product of cellular metabolism, is today recognized as a crucial gasotransmitter in Eukaryotes. Moreover, most bacteria harbor the eukaryotic orthologous genes for H2S synthesis, and these genes have been linked to different metabolic pathways. Some bacteria, however, produce high amounts of H2S in their extracellular space, a characteristic classically used for identification purposes. This is the case of Salmonella Typhimurium, which produces H2S by its phsABC operon. Here we show that extracellular release of H2S by S. Typhimurium is solely dependent on its phsABC operon. Furthermore, we show that S. Typhimurium and other H2S-producing bacteria can interact with physically distant bacteria through H2S production. We demonstrate how H2S can revert intrinsic cephalosporin resistance of Enterococccus faecalis and Enterococcus faecium to complete susceptibility. This study constitutes a significant step in the study of bacterial interplay and niche competition. Furthermore, as H2S releasing drugs have already been designed, our results open the way to future therapeutic alternatives for the treatment of infections caused by enterococci, multiresistant pathogens for which no treatments are clinically available.

Abstract Multidrug resistance (MDR) plasmids drive the spread of antibiotic resistance between bacterial lineages. The immediate impact of MDR plasmid acquisition on fitness and cellular processes varies among bacterial lineages, but how the evolutionary processes enabling the genomic integration of MDR plasmids vary is less well understood, particularly in clinical pathogens. Using diverse Escherichia coli lineages experimentally evolved for ∼700 generations, we show that the evolutionary response to gaining the MDR plasmid pLL35 was dominated by chromosomal mutations affecting metabolic and regulatory functions, with both strain-specific and shared mutational targets. The expression of several of these functions, such as anaerobic metabolism, is known to be altered upon acquisition of pLL35. Interactions with resident mobile genetic elements, notably several IS-elements, potentiated parallel mutations, including insertions upstream of hns that were associated with its upregulation and the downregulation of the plasmid-encoded extended-spectrum beta-lactamase gene. Plasmid parallel mutations targeted conjugation-related genes, whose expression was also commonly downregulated in evolved clones. Beyond their role in horizontal gene transfer, plasmids can be an important selective force shaping the evolution of bacterial chromosomes and core cellular functions.

Abstract Multi-drug resistant (MDR) Escherichia coli are a major global threat to human health, wherein multi-drug resistance is primarily spread by MDR plasmid acquisition. MDR plasmids are not widely distributed across the entire E. coli species, but instead are concentrated in a small number of clones. Here, we test if diverse E. coli strains vary in their ability to acquire and maintain MDR plasmids, and if this relates to their transcriptional response following plasmid acquisition. We used strains from across the diversity of E. coli, including the common MDR lineage ST131, and the IncF plasmid, pLL35, encoding multiple antibiotic resistance genes. Strains varied in their ability to acquire pLL35 by conjugation, but all were able to stably maintain the plasmid. The effects of pLL35 acquisition on cefotaxime resistance and growth also varied among strains, with growth responses ranging from a small decrease to a small increase in growth of the plasmid-carrier relative to the parental strain. Transcriptional responses to pLL35 acquisition were limited in scale and highly strain specific. We observed significant transcriptional responses at the operon or regulon level, possibly due to stress responses or interactions with resident MGEs. Subtle transcriptional responses consistent across all strains were observed affecting functions, such as anaerobic metabolism, previously shown to be under negative frequency dependent selection in MDR E. coli. Overall, there was no correlation between the magnitude of the transcriptional and growth responses across strains. Together these data suggest that fitness costs arising from transcriptional disruption are unlikely to act as a barrier to dissemination of this MDR plasmid in E. coli. Importance Plasmids play a key role in bacterial evolution by transferring niche adaptive functions between lineages, including driving the spread of antibiotic resistance genes. Fitness costs of plasmid acquisition arising from the disruption of cellular processes could limit the spread of multidrug resistance plasmids. However, the impacts of plasmid acquisition are typically measured in lab-adapted strains rather than in more ecologically relevant natural isolates. Using a clinical multidrug resistance plasmid and a diverse collection of E. coli strains isolated from clinical infections and natural environments, we show that plasmid acquisition had only limited and highly strain-specific effects on bacterial growth and transcription. These findings suggest that fitness costs arising from transcriptional disruption are unlikely to act as a barrier to transmission of this plasmid in natural populations of E. coli.