Tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha), also known as cachectin, was demonstrated to induce the expression of human immunodeficiency virus (HIV) in a chronically infected T-cell clone (ACH-2). Concentrations of recombinant TNF-alpha as low as 50 pg/ml induced a significant increase over background of HIV expression in the ACH-2 cells as determined by supernatant reverse transcriptase activity. The HIV-inducing effects of TNF-alpha could not be explained by toxic effects on the cells. In addition, both the uninfected parental cell line (A3.01) and the infected ACH-2 cells were shown to have high-affinity receptors for TNF-alpha. Transient-transfection experiments demonstrated that the inductive effects of TNF-alpha were due to specific activation of the HIV long terminal repeat. These studies provide evidence that TNF-alpha may play a role in the mechanisms of pathogenesis of HIV infection.

A T cell clone (ACH-2) derived from T cells infected with HIV-1 was found to produce HIV-1 in response to stimulation with a monokine-enriched supernatant prepared by culturing human monocyte/macrophages with bacterial LPS (LPS-MO SN). Monokine induction of ACH-2 cells resulted in augmented virus production reflected by an increase in reverse transcriptase activity and in the synthesis of all major viral proteins. Examination of the cells by indirect immunofluorescence revealed that 10 to 15% of uninduced cells constitutively expressed HIV proteins, whereas 100% showed positive immunofluorescence in response to LPS-MO SN. This induction of virus by LPS-MO SN resulted in approximately a 100-fold increase of infectious virus production over uninduced ACH-2 cells. LPS alone could not induce HIV-1 expression, whereas LPS-MO SN resulted in the greatest virus expression. Cell separation studies confirmed the source of the inducing factor(s) to be cells bearing the mature monocyte/macrophage marker, Leu M3. Biochemical fractionation of the LPS-MO SN suggested that one or more factors, having apparent Mr of approximately 45 kDa, were involved in this induction. Absorption of the LPS-MO SN with immunoaffinity gels specific for human TNF-alpha was shown to completely remove the HIV inducing activity for the ACH-2 cell line.

Therapeutic protein products provide unique and effective treatments for numerous human diseases and medical conditions. In many cases, these treatments are used chronically to slow disease progression, reduce morbidity and/or to replace essential proteins that are not produced endogenously in patients. Therefore, any factor that reduces or eliminates the effectiveness of the treatment can lead to patient suffering and even death. One means by which efficacy of therapeutic proteins can be compromised is by an immune response, resulting in antibody-mediated neutralization of the protein’s activity or alterations in bioavailability.

The genome of the human immunodeficiency virus (HIV) contains several open reading frames (ORFs) not present in other viruses. The 'A' gene, also known as Q2 P'3, ORF-1(4) or sor5, partially overlaps the pol gene; its protein product has a relative molecular mass of 23,000 (Mr 23K) and is present in productively infected cells. The function of this protein is unclear; mutant viruses deleted in 'A' replicate in and kill CD4+ lymphocyte lines, but the high degree of conservation of the deduced amino-acid sequence in nine different HIV isolates (80%) and the presence of analogous genes in HIV-2 and other lentiviruses suggest that the gene function is an important one. Here we describe a mutant virus deficient in the 'A' gene which produces virion particles normally; however, the particles are approximately 1,000 times less infective than wild type. Transcomplementation experiments partially restore infectivity. The mutant virus spreads efficiently when virus-producing cells are co-cultivated with CD4+ lymphocytes, however, indicating that HIV can spread from cell to cell in a mechanism that does not require the 'A' gene product and probably does not require the production of infective virus particles.

On February 22, 2013, the FDA licensed ado-trastuzumab emtansine (Kadcyla; Genentech, Inc.) for use as a single agent for the treatment of patients with human epidermal growth factor receptor 2 (HER2)-positive metastatic breast cancer (MBC) who previously received trastuzumab and a taxane, separately or in combination. The clinical basis for licensure was a phase III trial in 991 patients with HER2-positive MBC that randomly allocated patients to receive ado-trastuzumab emtansine (n=495) or lapatinib in combination with capecitabine (n=496). The coprimary endpoints were progression-free survival (PFS) based on tumor assessments by an independent review committee and overall survival (OS). Statistically significant improvements in PFS and OS were observed in patients receiving ado-trastuzumab emtansine compared with patients receiving lapatinib plus capecitabine [difference in PFS medians of 3.2 months, HR, 0.65 (95% confidence interval, CI, 0.55-0.77), P<0.0001 and difference in OS medians of 5.8 months, HR, 0.68 (95% CI, 0.55-0.85), P=0.0006]. The most common adverse reactions in patients receiving ado-trastuzumab emtansine were fatigue, nausea, musculoskeletal pain, thrombocytopenia, headache, increased aminotransferase levels, and constipation. Other significant adverse reactions included hepatobiliary disorders and left ventricular dysfunction. Given the PFS and OS results, the benefit-risk profile was considered favorable.

Abstract Proinflammatory cytokine production following infection with severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS CoV-2) is associated with poor clinical outcomes. Like SARS CoV-1, SARS CoV-2 enters host cells via its spike protein, which attaches to angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2). As SARS CoV-1 spike protein is reported to induce cytokine production, we hypothesized that this pathway could be a shared mechanism underlying pathogenic immune responses. We herein compared the capabilities of Middle East Respiratory Syndrome (MERS), SARS CoV-1 and SARS CoV-2 spike proteins to induce cytokine expression in human peripheral blood mononuclear cells (PBMC). We observed that only specific commercial lots of SARS CoV-2 induce cytokine production. Surprisingly, recombinant SARS CoV-2 spike proteins from different vendors and batches exhibited different patterns of cytokine induction, and these activities were not inhibited by blockade of spike protein-ACE2 binding using either soluble ACE2 or neutralizing anti-S1 antibody. Moreover, commercial spike protein reagents contained varying levels of endotoxin, which correlated directly with their abilities to induce cytokine production. The lipopolysaccharide (LPS) inhibitor, polymyxin B, blocked this cytokine induction activity. In addition, SARS CoV-2 spike protein avidly bound soluble LPS in vitro , rendering it a cytokine inducer. These results not only suggest caution in monitoring the purity of SARS CoV-2 spike protein reagents, but they indicate the possibility that interactions of SARS CoV-2 spike protein with LPS from commensal bacteria in virally infected mucosal tissues could promote pathogenic inflammatory cytokine production.