Abstract Mapping the wired connectivity of a nervous system is a prerequisite for full understanding of function. In this respect, such endeavours can be likened to genome sequencing projects. These projects similarly produce impressive amounts of data which, whilst a technical tour-de-force , remain under-utilised without validation. Validation of neuron synaptic connectivity requires electrophysiology which has the necessary temporal and spatial resolution to map synaptic connectivity. However, this technique is not common and requires extensive equipment and training to master, particularly when applied to the small CNS of the Drosophila larva. Thus, validation of connectivity in this CNS has been more reliant on behavioural analyses and, in particular, activity imaging using the calcium-sensor GCaMP. Whilst both techniques are powerful, they each have significant limitations for this purpose. Here we use electrophysiology to validate an array of driver lines reported to label specific premotor interneurons that the Drosophila connectome project suggests are monosynaptically connected to an identified motoneuron termed the anterior corner cell (aCC). Our results validate this proposition for four selected lines. Thus, in addition to validating the connectome with respect to these four premotor interneurons, our study highlights the need to functionally validate driver lines prior to use.

As nervous systems develop, activity perturbations during critical periods can lead to permanently altered network function. However, how activity perturbation influences individual synapses, the network response and the underlying signalling mechanisms are not well understood. Here, we exploit a recently identified critical period in the development of the Drosophila larval locomotor circuit to show that activity perturbation differentially affects individual and identified synaptic pairings. Remarkably, we further show that activity-manipulation of a selective excitatory interneuron is sufficient to fully recapitulate the effects induced by network-wide activity disturbance; indicative that some neurons make a greater contribution to network tuning. We identify nitric oxide (NO)-signalling as a potential mediator of activity-dependent network tuning during the critical period. Significantly, the effect of NO-signalling to network tuning is dictated by the prior activity state of the network. Thus, this study provides mechanistic insight that is currently lacking into how activity during a critical period tunes a developing network.

Solid tumours are less oxygenated than normal tissues. This is called tumour hypoxia and leads to resistance to radiotherapy and chemotherapy. The molecular mechanisms underlying such resistance have been investigated in a range of tumour types, including the adult brain tumours glioblastoma, yet little is known for paediatric brain tumours. Medulloblastoma (MB) is the most common malignant brain tumour in children. Here we used a common MB cell line (D283-MED), to investigate the mechanisms of chemo and radio-resistance in MB, comparing to another MB cell line (MEB-Med8A) and to a widely used glioblastoma cell line (U87MG). In D283-MED and U87MG, chronic hypoxia (5 days), but not acute hypoxia (24 h) induced resistance to etoposide and X-ray irradiation. This acquired resistance upon chronic hypoxia was much less pronounced in MEB-Med8A cells. Using a transcriptomic approach in D283-MED cells, we found a large transcriptional remodelling upon long term hypoxia, in particular the expression of a number of genes involved in detection and repair of double strand breaks (DSB) was altered. The levels of Nibrin (NBN) and MRE11, members of the MRN complex (MRE11/Rad50/NBN) responsible for DSB recognition, were significantly down-regulated. This was associated with a reduction of Ataxia Telangiectasia Mutated (ATM) activation by etoposide, indicating a profound dampening of the DNA damage signalling in hypoxic conditions. As a consequence, p53 activation by etoposide was reduced, and cell survival enhanced. Whilst U87MG shared the same dampened p53 activity, upon chemotherapeutic drug treatment in chronic hypoxic conditions, these cells used a different mechanism, independent of the DNA damage pathway. Together our results demonstrate a new mechanism explaining hypoxia-induced resistance involving the alteration of the response to DSB, but also highlight the cell type to cell type diversity and the necessity to take into account the differing tumour genetic make-up when considering re-sensitisation therapeutic protocols.

Manipulating neuronal homeostasis, which enables neurons to regulate their intrinsic excitability, offers an attractive opportunity to prevent seizures. However, no anticonvulsant compounds have yet been reported that directly manipulate neuronal homeostasis. Here, we describe a novel class of anticonvulsant compounds, based on 4- tert -butyl-benzaldehyde (4-TBB), with a mode-of-action that includes increased expression of the homeostatic regulator Pumilio (Pum). In Drosophila and mouse we use a pentylenetetrazole (PTZ) induced seizure model, and an electrically induced seizure model for refractory seizures to evaluate anticonvulsant efficacy. The pyrazole analogue (RAB216) demonstrates best efficacy, protecting 50% of mice from PTZ-induced seizure. Knock-down of Pum, in Drosophila , blocks anticonvulsive effects, whilst analysis of validated Pum targets show significant reductions following exposure of mouse brain to 4-TBB. This study provides proof-of-principle that anticonvulsant effects can be achieved through regulation of neuronal homeostasis and identifies a chemical lead compound for future development.