In less than a decade, C. auris has emerged in health care settings worldwide; this species is capable of colonizing skin and causing outbreaks of invasive candidiasis. In contrast to other Candida species, C. auris is unique in its ability to spread via nosocomial transmission and its high rates of drug resistance. As part of the public health response, whole-genome sequencing has played a major role in characterizing transmission dynamics and detecting new C. auris introductions. Through a global collaboration, we assessed genome evolution of isolates of C. auris from 19 countries. Here, we described estimated timing of the expansion of each C. auris clade and of fluconazole resistance, characterized discrete phylogeographic population structure of each clade, and compared genome data to sensitivity measurements to describe how antifungal resistance mechanisms vary across the population. These efforts are critical for a sustained, robust public health response that effectively utilizes molecular epidemiology.

The order Mucorales comprises predominantly fast-growing saprotrophic fungi, some of which are used for the fermentation of foodstuffs but it also includes species known to cause infections in patients with severe immune or metabolic impairments. To inventory biodiversity in Mucorales ITS barcodes of 668 strains in 203 taxa were generated covering more than two thirds of the recognised species. Using the ITS sequences, Molecular Operational Taxonomic Units were defined by a similarity threshold of 99 %. An LSU sequence was generated for each unit as well. Analysis of the LSU sequences revealed that conventional phenotypic classifications of the Mucoraceae are highly artificial. The LSU- and ITS-based trees suggest that characters, such as rhizoids and sporangiola, traditionally used in mucoralean taxonomy are plesiomorphic traits. The ITS region turned out to be an appropriate barcoding marker in Mucorales. It could be sequenced directly in 82 % of the strains and its variability was sufficient to resolve most of the morphospecies. Molecular identification turned out to be problematic only for the species complexes of Mucor circinelloides, M. flavus, M. piriformis and Zygorhynchus moelleri. As many as 12 possibly undescribed species were detected. Intraspecific variability differed widely among mucorealean species ranging from 0 % in Backusella circina to 13.3 % in Cunninghamella echinulata. A high proportion of clinical strains was included for molecular identification. Clinical isolates of Cunninghamella elegans were identified molecularly for the first time. As a result of the phylogenetic analyses several taxonomic and nomenclatural changes became necessary. The genus Backusella was emended to include all species with transitorily recurved sporangiophores. Since this matched molecular data all Mucor species possessing this character were transferred to Backusella. The genus Zygorhynchus was shown to be polyphyletic based on ITS and LSU data. Consequently, Zygorhynchus was abandoned and all species were reclassified in Mucor. Our phylogenetic analyses showed, furthermore, that all non-thermophilic Rhizomucor species belong to Mucor. Accordingly, Rhizomucor endophyticus was transferred to Mucor and Rhizomucor chlamydosporus was synonymised with Mucor indicus. Lecto-, epi- or neotypes were designated for several taxa.

A population-based survey was conducted to investigate the epidemiology of and antifungal resistance in Spanish clinical strains of filamentous fungi isolated from deep tissue samples, blood cultures, and respiratory samples. The study was conducted in two different periods (October 2010 and May 2011) to analyze seasonal variations. A total of 325 strains were isolated in 29 different hospitals. The average prevalence was 0.016/1,000 inhabitants [corrected]. Strains were identified by sequencing of DNA targets and susceptibility testing by the European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing reference procedure. The most frequently isolated genus was Aspergillus, accounting for 86.3% of the isolates, followed by Scedosporium at 4.7%; the order Mucorales at 2.5%; Penicillium at 2.2%, and Fusarium at 1.2%. The most frequent species was Aspergillus fumigatus (48.5%), followed by A. flavus (8.4%), A. terreus (8.1%), A. tubingensis (6.8%), and A. niger (6.5%). Cryptic/sibling Aspergillus species accounted for 12% of the cases. Resistance to amphotericin B was found in 10.8% of the isolates tested, while extended-spectrum triazole resistance ranged from 10 to 12.7%, depending on the azole tested. Antifungal resistance was more common among emerging species such as those of Scedosporium and Mucorales and also among cryptic species of Aspergillus, with 40% of these isolates showing resistance to all of the antifungal compounds tested. Cryptic Aspergillus species seem to be underestimated, and their correct classification could be clinically relevant. The performance of antifungal susceptibility testing of the strains implicated in deep infections and multicentric studies is recommended to evaluate the incidence of these cryptic species in other geographic areas.

The Candida haemulonii species complex is currently known as C. haemulonii groups I and II. Here we describe C. haemulonii group II as a new species, Candida duobushaemulonii sp. nov., and C. haemulonii var. vulnera as new a variety of C. haemulonii group I using phenotypic and molecular methods. These taxa and other relatives of C. haemulonii (i.e., Candida auris and Candida pseudohaemulonii) cannot be differentiated by the commercial methods now used for yeast identification. Four isolates (C. haemulonii var. vulnera) differed from the other isolates of C. haemulonii in the sequence of the internal transcribed spacer (ITS) regions of the nuclear rRNA gene operon. The new species and the new variety have a multiresistant antifungal profile, which includes high MICs of amphotericin B (geometric mean MIC, 1.18 mg/liter for C. haemulonii var. vulnera and 2 mg/liter for C. duobushaemulonii sp. nov) and cross-resistance to azole compounds. Identification of these species should be based on molecular methods, such as sequence analysis of ITS regions and matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry.

Mucormycosis is an emerging opportunistic fungal infection. Increasing immunocompromization, widespread use of antibacterial and antifungal agents (such as voriconazole prophylaxis), carcinomas, transplantation and lifestyle diseases such as diabetes are the main contributors to this situation. The predominant clinical manifestations of mucormycosis vary from host to host, with rhino-orbital-cerebral, pulmonary, cutaneous, and gastrointestinal infections being the most common. In India, the prevalence of mucormycosis is approximately 0.14 cases/1000 population, which is about 70 times the worldwide-estimated rate for mucormycosis. The present study was undertaken over a period of five years (January 2009-December 2014) to determine the prevalence of mucormycosis. The samples suspected of mucormycosis were examined by direct KOH wet mount and cultured on Sabouraud's dextrose agar without actidione and on blood agar as per standard mycological techniques. Histopathological correlation was done for most of the cases. Antifungal susceptibility testing was performed by the EUCAST reference method. We identified a total of 82 cases of mucormycosis out of a total of 6365 samples received for mycological culture and examination during the said time period. Out of these, 56 were male patients and 27 were females. Most common presentation was rhino-orbito-cerebral (37), followed by cutaneous (25), pulmonary (14), oral cavity involvement (4) and gastrointestinal (2). The most common risk factors were diabetes and intramuscular injections. The fungi isolated were Rhizopus arrhizus (17), Apophysomyces variabilis (12), R. microsporus (9), Lichtheimia ramosa (8), Saksenaea erythrospora (5), Syncephalastrum racemosus (4), R. homothallicus (2), Rhizomucor pusillus (1), Mucor irregularis (1) and A. elegans (1). The mainstay of the treatment was amphotericin B, along with extensive surgical debridement whenever feasible. Most of the patients (50) recovered, but 25 died. The rest of the patients left against medical advice. "Nip in the Bud" should be the mantra for clinicians/surgeons for a favorable prognosis. Early diagnosis, prompt institution of appropriate antifungal therapy, surgical debridement whenever necessary, knowledge of risk factors and their timely reversal is the key for management.

Abstract Objectives We aimed to report the emergence of azole-resistant invasive aspergillosis in hematologic patients admitted to a tertiary hospital in Spain during the last 4 months. Methods Prospective, descriptive study was performed to describe and follow all consecutive proven and probable invasive aspergillosis resistant to azoles from hematological cohort during the last 4 months. All patients had fungal cultures and antifungal susceptibility or real-time PCR detection for Aspergillus species and real-time PCR detection for azole-resistant mutation. Results Four cases of invasive aspergillosis were diagnosed in 4 months. Three of them had azole-resistant aspergillosis. Microbiological diagnosis was achieved in three cases by means of fungal culture isolation and subsequent antifungal susceptibility whereas one case was diagnosed by PCR-based aspergillus and azole resistance detection. All the azole-resistant aspergillosis presented TR34/L98H mutation. Patients with azole-resistant aspergillosis had different hematologic diseases: multiple myeloma, lymphoblastic acute leukemia, and angioimmunoblastic T lymphoma. Regarding risk factors, one had prolonged neutropenia, two had corticosteroids, and two had viral co-infection. Two of the patients developed aspergillosis under treatment with azoles. Conclusion We have observed a heightened risk of azole-resistant aspergillosis caused by A. fumigatus harboring the TR 34 /L98H mutation in patients with hematologic malignancies. The emergence of azole-resistant aspergillosis raises concerns for the community, highlighting the urgent need for increased surveillance and the importance of susceptibility testing and new drugs development.

The coelomycetous fungi are difficult to properly identify from their phenotypic characterization and their role as etiologic agents of human infections is not clear. We studied the species distribution of these fungi among clinical isolates that had been collected and stored over a ten-year period in two European reference laboratories (France and Spain). We identified phenotypically and molecularly 97 isolates by sequencing the D1-D2 fragment of the 28S nrRNA (LSU) gene. Species of the orders Pleosporales and Glomerellales were present in both collections, and Botryosphaeriales and Diaporthales only in the French one. The most prevalent species were Medicopsis romeroi, Neocucurbitaria keratinophila, Neocucurbitaria unguis-hominis and Paraconiothyrium cyclothyrioides, which had been recovered primarily from superficial tissues. The Didymellaceae was the most common family represented, with 27 isolates distributed into five genera

Candida auris has emerged globally as a multidrug-resistant yeast that can spread via nosocomial transmission. An initial phylogenetic study of isolates from Japan, India, Pakistan, South Africa, and Venezuela revealed four populations (Clades I, II, III, and IV) corresponding to these geographic regions. Since this description, C. auris has been reported in over 30 additional countries. To trace this global emergence, we compared the genomes of 304 C. auris isolates from 19 countries on six continents. We found that four predominant clades persist across wide geographic locations. We observed phylogeographic mixing in most clades; Clade IV, with isolates mainly from South America, demonstrated the strongest phylogeographic substructure. C. auris isolates from two clades with opposite mating types were detected contemporaneously in a single healthcare facility in Kenya. We estimated a Bayesian molecular clock phylogeny and dated the origin of each clade within the last 339 years; outbreak-causing clusters from Clades I, III, and IV originated 34-35 years ago. We observed high rates of antifungal resistance in Clade I, including four isolates resistant to all three major classes of antifungals. Mutations that contribute to resistance varied between the clades, with Y132F in ERG11 as the most widespread mutation associated with azole resistance and S639P in FKS1 for echinocandin resistance. Copy number variants in ERG11 predominantly appeared in Clade III and were associated with fluconazole resistance. These results provide a global context for the phylogeography, population structure, and mechanisms associated with antifungal resistance in C. auris.

Fungal pathogens are a global threat to human health. For example, fungi from the genus Aspergillus cause a spectrum of diseases collectively known as aspergillosis. Most of the >200,000 life-threatening aspergillosis infections per year worldwide are caused by Aspergillus fumigatus . Recently, molecular typing techniques have revealed that aspergillosis can also be caused by organisms that are phenotypically similar to A. fumigatus but genetically distinct, such as Aspergillus lentulus and Aspergillus fumigatiaffinis . Importantly, some of these so-called cryptic species exhibit different virulence and drug susceptibility profiles than A. fumigatus , however, our understanding of their biology and pathogenic potential has been stymied by the lack of genome sequences and phenotypic profiling. To fill this gap, we phenotypically characterized the virulence and drug susceptibility of 15 clinical strains of A. fumigatus , A. lentulus , and A. fumigatiaffinis from Spain and sequenced their genomes. We found heterogeneity in virulence and drug susceptibility across species and strains. Genes known to influence drug susceptibility ( cyp51A and fks1 ) vary in paralog number and sequence among these species and strains and correlate with differences in drug susceptibility. Similarly, genes known to be important for virulence in A. fumigatus showed variability in number of paralogs across strains and across species. Characterization of the genomic similarities and differences of clinical strains of A. lentulus , A. fumigatiaffinis , and A. fumigatus that vary in disease-relevant traits will advance our understanding of the variance in pathogenicity between Aspergillus species and strains that are collectively responsible for the vast majority of aspergillosis infections in humans.