The presence of pharmaceutical and personal care products (PPCPs) residues in the aquatic environment is an emerging issue due to their uncontrolled release, through grey water, and accumulation in the environment that may affect living organisms, ecosystems and public health. The aim of this study is to assess the toxicity of benzophenone-3 (BP-3), bis-ethylhexyloxyphenol methoxyphenyl triazine (BEMT), butyl methoxydibenzoylmethane (BM), methylene bis-benzotriazolyl tetramethylbutylphenol (MBBT), 2-Ethylhexyl salicylate (ES), diethylaminohydroxybenzoyl hexyl benzoate (DHHB), diethylhexyl butamido triazone (DBT), ethylhexyl triazone (ET), homosalate (HS), and octocrylene (OC) to marine organisms from two major trophic levels including autotrophs (Tetraselmis sp.) and heterotrophs (Artemia salina). In general, EC50 results show that both HS and OC are the most toxic for our tested species, followed by a significant effect of BM on Artemia salina but only at high concentrations (1 mg/L) and then an effect of ES, BP3 and DHHB on the metabolic activity of the microalgae at 0.1 mg/L. BEMT, DBT, ET, MBBT had no effect on the tested organisms, even at high concentrations (2mg/L). OC toxicity represent a risk for those species since it is observed at concentrations only 15 to 90 times higher than the highest concentrations reported in the natural environment and HS toxicity is for the first time reported on microalgae and was very important on Tetraselmis sp. at concentrations close to the natural environment concentrations.

From March to June 2020, governments across the world imposed lockdowns in an attempt to reduce the transmission of COVID-19 during the early phase of the pandemic. This period of time in which human activity slowed worldwide has been coined the "Anthropause". The goal of this study was to determine if sunscreen pollution abated during the Anthropause and to identify the severity of the pollution when tourism/recreation recovered at two coastal units of the U.S. National Park System: Kaloko-Honokōhau National Historical Park in Hawaiʻi, U.S.A. and Cape Lookout National Seashore in North Carolina, U.S.A. Active ingredients of sunscreen products were measured in water and sand samples at both locations, including oxybenzone, octinoxate, octocrylene, octisalate, homosalate, and relevant breakdown products of some of these ingredients. A risk assessment was conducted on Anthropause and post-Anthropause contaminant levels for both locations to determine if there was a threat reduction during the Anthropause, and whether tourism recovery in the post-Anthropause period served as a threat to coastal wildlife. Both national park units exhibited an almost absolute reduction in the levels of sunscreen contamination during the Anthropause period, a striking commonality considering the geographic expanse separating the parks. Once travel restrictions were lifted, a large influx of tourists ensued at both locations, resulting in a relatively sudden and dangerous increase in the levels of sunscreen chemical pollution. This study supports the argument that unmanaged tourism is a source of coastal sunscreen pollution that poses a threat to the localized continuity of species populations and biodiversity, especially to coral reefs and fisheries.

Abstract Multi-omic approaches have recently made big strides towards the effective exploration of microorganisms and accelerating the discovery of new bioactive compounds. We combined metabolomic, molecular networking, and genomic-based approaches to investigate the metabolic potential of the Streptomyces sp. RO-S4 strain isolated from the polluted waters of Bejaia Bay in Algeria. Antagonistic assays against methicillin-resistant Staphylococcus aureus with RO-S4 organic extracts showed an inhibition zone of 20 mm by the agar diffusion method, and its minimum inhibitory concentration was 16 μg/mL. A molecular network was created using GNPS and annotated through the comparison of MS/MS spectra against several databases. The predominant compounds in the RO-S4 extract belonged to the angucyclines family. Three compounds were annotated as known metabolites, while all the others were putatively new to Science. Notably, all compounds had fridamycin-like aglycones, and several of them had a lactonized D ring analogous to that of urdamycin L. The whole genome of Streptomyces RO-S4 was sequenced to identify the biosynthetic gene cluster (BGC) encoding for these angucyclines, which yielded a draft genome of 7,497,846 bp with 72.4% G+C content. Subsequently, a genome mining analysis revealed 19 putative biosynthetic gene clusters, including a grincamycin-like BGC with a high similarity to that of Streptomyces sp. CZN-748 previously reported to also produce mostly open fridamycin-like aglycones. As the ring-opening process leading to these compounds is still not defined, we performed comparative analysis with other angucycline BGCs and advanced some hypotheses to explain the ring-opening and lactone formation, possibly linked to the uncoupling between the activity of GcnE and GcnM homologues in the RO-S4 strain. The combination of metabolomic and genomic approaches greatly improved the interpretation of the metabolic potential of the RO-S4 strain.

Introduction In contrast to the dynamics observed in plant/pathogen interactions, endophytic fungi have the capacity to establish enduring associations within their hosts, leading to the development of a mutually beneficial relationship that relies on specialized chemical interactions. Research indicates that the presence of endophytic fungi has the ability to significantly modify the chemical makeup of the host organism. Our hypothesis proposes the existence of a reciprocal exchange of chemical signals between plants and fungi, facilitated by specialized chemical processes that could potentially manifest within the tissues of the host. This research aimed to precisely quantify the portion of the cumulative fungal endophytic community's metabolome detectable within host leaves, and tentatively evaluate its relevance to the host-endophyte interplay. The understory palm Astrocaryum sciophilum (Miq.) Pulle was used as a interesting host plant because of its notable resilience and prolonged life cycle, in a tropical ecosystem. Method Using advanced metabolome characterization, including UHPLC-HRMS/MS and molecular networking, the study explored enriched metabolomes of both host leaves and 15 endophytic fungi. The intention was to capture a metabolomic "snapshot" of both host and endophytic community, to achieve a thorough and detailed analysis. Results and discussion This approach yielded an extended MS-based molecular network, integrating diverse metadata for identifying host- and endophyte-derived metabolites. The exploration of such data (>24000 features in positive ionization mode) enabled effective metabolome comparison, yielding insights into cultivable endophyte chemodiversity and occurrence of common metabolites between the holobiont and its fungal communities. Surprisingly, a minor subset of features overlapped between host leaf and fungal samples despite significant plant metabolome enrichment. This indicated that fungal metabolic signatures produced in vitro remain sparingly detectable in the leaf. Several classes of primary metabolites were possibly shared. Specific fungal metabolites and/or compounds of their chemical classes were only occasionally discernible in the leaf, highlighting endophytes partial contribution to the overall holobiont metabolome. To our knowledge, the metabolomic study of a plant host and its microbiome has rarely been performed in such a comprehensive manner. The general analytical strategy proposed in this paper seems well-adapted for any study in the field of microbial- or microbiome-related MS and can be applied to most host-microbe interactions.