A database provides information on the relative abundances and locations of human proteins that are predicted to be secreted.

ABSTRACT G protein-coupled receptors (GPCRs) control critical cellular signaling pathways. Therapeutic agents, such as antibodies (Abs), are being developed to modulate GPCR signaling pathways. However, validating the selectivity of anti-GPCR Abs is challenging due to sequence similarities of individual receptors within GPCR subfamilies. To address this, we developed a multiplexed immunoassay to test >400 anti-GPCR Abs from the Human Protein Atlas targeting a customized library of 215 expressed and solubilized GPCRs representing all GPCR subfamilies. We found that ~61% of Abs were selective for their intended target, ~11% to bind off-target, and ~28% not to bind any GPCR. Antigens of on-target Abs were, on average, significantly longer, more disordered, and less likely to be buried in the interior of the GPCR protein than the other Abs. These results provide important insights into the immunogenicity of GPCR epitopes and form a basis for the design of therapeutic Abs and the detection of pathological auto-antibodies. TEASER A multiplexed library-to-library selectivity analysis of 400 anti-GPCR antibodies within subfamilies of 200 solubilized receptors.

Abstract Cholestatic itch is a severe and debilitating symptom in liver diseases with limited treatment options. The class A G protein-coupled receptor (GPCR) Mas-related GPCR subtype X4 (MRGPRX4) has been identified as a receptor for bile acids, which are potential cholestatic pruritogens. An increasing number of GPCRs have been shown to interact with receptor activity-modifying proteins (RAMPs), which can modulate different aspects of GPCR biology. Using a combination of multiplexed immunoassay and proximity ligation assay we show that MRGPRX4 interacts with RAMPs. The interaction of MRGPRX4 with RAMP2, but not RAMP1 or 3, causes attenuation of basal and agonist-dependent signaling, which correlates with a decrease of MRGPRX4 cell surface expression as measured using a quantitative NanoBRET pulse-chase assay. Finally, we use AlphaFold Multimer to predict the structure of the MRGPRX4-RAMP2 complex. The discovery that RAMP2 regulates MRGPRX4 may have direct implications for future drug development for cholestatic itch.

Although receptor activity-modifying proteins (RAMPs) have been shown to modulate the functions of several different G protein-coupled receptors (GPCRs), potential direct interactions among the three known RAMPs and hundreds of GPCRs has never been investigated. We engineered three epitope-tagged RAMPs and 23 epitope-tagged GPCRs, focusing on the secretin-like family of GPCRs, and developed a suspension bead array (SBA) immunoassay designed to detect RAMP-GPCR complexes. We then used 64 antibodies raised against native RAMPs and GPCRs, along with four antibodies targeting the epitope tags, to multiplex the SBA assay to detect and measure all possible combinations of interaction among the 23 GPCRs and three RAMPs. The results of the SBA assay provide a complete interactome of secretin-like GPCRs with RAMPs. We demonstrate direct interaction of previously reported secretin-like GPCRs whose functions are modulated by RAMPs. We also discovered novel sets of GPCR-RAMP interacting pairs, and found additional secretin-like GPCRs, chemokine receptors and orphan receptors that interact with RAMPs. Using in situ proximity ligation assay, we verified a subset of these novel GPCR-RAMP interactions in cell membranes. In total, we found GPCR-RAMP interactions for the majority of the 23 GPCRs tested. Each GPCR interacted with either all three RAMPs or with RAMP2 and RAMP3, with the exception of one GPCR that interacted with just RAMP3. In summary, we describe an SBA strategy that will be useful to search for GPCR-RAMP interactions in cell lines and tissues, and conclude that GPCR-RAMP interactions are more common than previously appreciated.

Despite recognizing aging as risk factor of human diseases, little is still known about the molecular traits of biological age and mortality risk. To identify age-associated proteins circulating human blood, we screened 156 subjects aged 50-92 years using an exploratory and multiplexed affinity proteomics approach. We corroborated the top age-associated protein profile (adjusted P < 0.001) in eight additional study sets (N = 4,044 individuals), and confirmed a consistent age-associated increase (P = 6.61 × 10-6) by meta-analysis. Applying antibody validation determined circulating histidine-rich glycoprotein (HRG) as the target, and we observed that sequence variants influenced the antibodies ability to bind to the protein. Profiles of circulating HRG were associated to several clinical traits and predicted the risk of mortality during a follow-up period of 8.5 years (IQR = 7.7-9.3 years) after blood sampling (HR = 1.25 per SD; 95% CI = 1.12-1.39; P = 7.41 × 10-5). In conclusion, our affinity proteomics analysis found associations between the molecular traits of circulating HRG with age and all-cause mortality. This suggests that the profiles of multi-purpose protein HRG could serve as an accessible indicator of physiological processes related to aging.

The plasma proteome offers a clinically useful window into human health and disease. With recent progress made on the development of highly multiplexed immunoassays with high sample throughput, a remaining need is to establish a pipeline for validating the individual proteins that build such bio-signatures by using targeted assays. In order to streamline such efforts, we developed a workflow to build dual binder sandwich immunoassays (SIA) and chose to evaluate this on proteins predicted to be secreted form cells and tissues. Utilizing the multiplexing capacities of the bead array technology, we first screened ~ 1,800 unique antibody pairs against 209 protein targets and collected data from dilution series of recombinant proteins as well as EDTA plasma. Employing 624 unique antibodies from the Human Protein Atlas, we obtained dilution-dependent curves in plasma and concentration-dependent curves of full-length proteins for 102 (49%) of the targets. For 22 protein assays, the longitudinal, inter-individual and technical performance was determined in a set of plasma samples collected from 18 healthy subjects every third month over one year. Lastly, we compared 14 of these assays with SIAs composed of other binders, proximity extension assays and affinity-free targeted mass spectrometry. Our workflow provides a multiplexed approach to screen for SIA pairs that suggests using at least three antibodies per target. This design is applicable for a wider range of targets of the plasma proteome, while the assays can be applied for discovery but also to validate emerging candidates derived from other platforms.

Receptor activity-modifying proteins (RAMPs) can form complexes with G protein-coupled receptors (GPCRs) and regulate their cellular trafficking and pharmacology. RAMP interactions have been identified for about 50 GPCRs, but only a few GPCR-RAMP complexes have been studied in detail. To elucidate a complete interactome between GPCRs and the three RAMPs, we developed a customized library of 215 Dual Epitope-Tagged (DuET) GPCRs representing all GPCR subfamilies. Using a multiplexed suspension bead array (SBA) assay, we identified 122 GPCRs that showed strong evidence for interaction with at least one RAMP. We screened for native interactions in three cell lines and found 23 GPCRs that formed complexes with RAMPs. Mapping the GPCR-RAMP interactome expands the current system-wide functional characterization of RAMP-interacting GPCRs to inform the design of selective GPCR-targeted therapeutics.

Background: Precision medicine approaches aim to tackle diseases on an individual level through molecular profiling. Despite the growing knowledge about diseases and the reported diversity of molecular phenotypes, the descriptions of human health on an individual level have been far less elaborate. Methods: To provide insights into the longitudinal protein signatures of well-being, we profiled blood plasma collected over one year from 101 clinically healthy individuals using multiplexed antibody assays. After applying an antibody validation scheme, we utilized > 700 protein profiles for in-depth analyses of the individuals' short-term health trajectories. Findings: We found signatures of circulating proteomes to be highly individual-specific. Considering technical and longitudinal variability, we observed both stable and fluctuating proteins in the circulation, as well as networks of proteins that covaried over time. For each participant, there were unique protein profiles and some of these could be explained by associations to genetic variants. Interpretation: This study demonstrates that there was noticeable diversity among clinically healthy subjects, and facets of individual-specific signatures emerged by monitoring the variability of the circulating proteomes over time. Longitudinal profiling of circulating proteomes has the potential to enable a more personal hence precise assessment of health states, and thereby provide a valuable component of precision medicine approaches. Funding: This work was supported by the Erling Persson Foundation for the KTH Centre for Precision Medicine and the Swedish Heart and Lung Foundation for the SCAPIS project. We also acknowledge the Knut and Alice Wallenberg Foundation for funding the Human Protein Atlas project, Science for Life Laboratory for Plasma Profiling Facility, and the Swedish Research Council (Grant no 2017-00641).