Abstract Huntington’s disease (HD) is one of at least nine polyglutamine toxicity disorders caused by a trinucleotide CAG repeat expansion, all of which lead to age-onset neurodegeneration. Mitochondrial dynamics and function are disrupted in HD and other polyglutamine toxicity disorders. While multiple studies have found beneficial effects from decreasing mitochondrial fragmentation in HD models by disrupting the mitochondrial fission protein DRP1, disrupting DRP1 can also have detrimental consequences in wild-type animals and HD models. In this work, we examine the effect of decreasing mitochondrial fragmentation in a neuronal C. elegans model of polyglutamine toxicity called Neur-67Q. We find that Neur-67Q worms have deficits in mitochondrial morphology in GABAergic neurons and decreased mitochondrial function. Disruption of drp-1 eliminates differences in mitochondrial morphology and rescues deficits in both movement and longevity in Neur-67Q worms. In testing twenty-four RNA interference (RNAi) clones that decrease mitochondrial fragmentation, we identified eleven clones that increase movement and extend lifespan in Neur-67Q worms. Overall, we show that decreasing mitochondrial fragmentation may be an effective approach to treat polyglutamine toxicity disorders and identify multiple novel genetic targets that circumvent the potential negative side effects of disrupting the primary mitochondrial fission gene drp-1 . Significance Statement Polyglutamine toxicity disorders are caused by a trinucleotide CAG repeat expansion that leads to neurodegeneration. Both mitochondrial dynamics and function are disrupted in these disorders. In this work we use a simple genetic model organism, the worm C. elegans , to define the role of mitochondrial morphology in polyglutamine toxicity disorders. We show that CAG repeat expansion is sufficient to disrupt mitochondrial morphology and that genetic strategies that decrease mitochondrial fragmentation are beneficial in a neuronal model of polyglutamine toxicity. This work identifies multiple novel genes that are protective in worm models of polyglutamine toxicity, which may serve as potential therapeutic targets for Huntington’s disease and other polyglutamine toxicity disorders.

Abstract While mitochondrial function is essential for life in all multicellular organisms, a mild impairment of mitochondrial function can extend longevity. By understanding the molecular mechanisms involved, these pathways might be targeted to promote healthy aging. In studying two long-lived mitochondrial mutants in C. elegans, we found that disrupting subunits of the mitochondrial electron transport chain resulted in upregulation of genes involved in innate immunity, which we found to be dependent on not only the canonical p38-mediated innate immune signaling pathway but also on the mitochondrial unfolded protein response. Both of these pathways are absolutely required for the increased resistance to bacterial pathogens and extended longevity of the long-lived mitochondrial mutants, as is the FOXO transcription factor DAF-16. This work demonstrates that both the p38-mediated innate immune signaling pathway and the mitochondrial unfolded protein response can act on the same innate immunity genes to promote resistance to bacterial pathogens, and that input from the mitochondria can extend longevity by signaling through these two pathways. Combined, this indicates that multiple evolutionarily conserved genetic pathways controlling innate immunity also function to modulate lifespan. Significance Statement In this work, we explore the relationship between mitochondrial function, aging and innate immunity. We find that mild impairment of mitochondrial function results in upregulation of genes involved in innate immunity, increased resistance to bacterial pathogens and lifespan extension, all of which are dependent on two evolutionarily conserved signaling pathways. This work demonstrates how changes in functional status of the mitochondria can trigger activation of innate immunity, and that the underlying mechanisms are important for the longevity of the organism. This work advances our understanding of connections between metabolism and immunity. As the pathways studied here are conserved up to mammals, these insights may help us to understand the role of mitochondrial health, innate immunity and lifespan in humans.

ABSTRACT Mutations that extend lifespan are associated with enhanced resistance to stress. To better understand the molecular mechanisms underlying this relationship, we studied nine long-lived C. elegans mutants representative of different pathways of lifespan extension. We directly compared the magnitude of their lifespan extension and their ability to resist various external stressors (heat, oxidative stress, bacterial pathogens, osmotic stress, and anoxia). Furthermore, we analysed gene expression in each of these mutants to identify genes and pathways responsible for the enhanced resistance to stress. All of the examined long-lived mutants have increased resistance to one or more type of stress. Resistance to each of the examined types of stress had a significant, positive correlation with lifespan, with bacterial pathogen resistance showing the strongest relationship. All of the examined long-lived mutants have significant upregulation of multiple stress response pathways but differ in which stress response pathway has the greatest enrichment of genes. We used RNA sequencing data to identify which genes are most highly correlated with each type of stress resistance. There was a highly significant overlap between genes highly correlated with stress resistance, and genes highly correlated with longevity, suggesting that the same genetic pathways drive both phenotypes. This was especially true for genes correlated with bacterial pathogen resistance, which showed an 84% overlap with genes correlated with lifespan. Overall, our results demonstrate a strong correlation between stress resistance and longevity that results from the high degree of overlap in genes contributing to each phenotype. SIGNIFICANCE STATEMENT While increased resistance to stress has been correlated with longevity, the genetic basis for this relationship is incompletely understood. To advance our understanding of the relationship between stress resistance and lifespan, we measured lifespan, stress resistance and gene expression in a panel of nine long-lived mutants in C. elegans . All of the long-lived mutants exhibit enhanced resistance to at least one external stressor resulting from significant upregulation of multiple stress response pathways. Importantly, our data indicates that the same genetic pathways control stress resistance and lifespan, thereby accounting for the strong correlation between these two phenotypes. This work demonstrates the importance of innate immune signaling and other stress response pathways in determining longevity.

Expanded CAG nucleotide repeats are the underlying genetic cause of at least 14 incurable diseases, including Huntington's disease (HD). The toxicity associated with many CAG repeat expansions is thought to be due to the translation of the CAG repeat to create a polyQ protein, which forms toxic oligomers and aggregates. However, recent studies show that HD CAG repeats undergo a non-canonical form of translation called Repeat-associated non-AUG dependent (RAN) translation. RAN translation of the CAG sense and CUG anti-sense RNAs produces six distinct repeat peptides: polyalanine (polyAla, from both CAG and CUG repeats), polyserine (polySer), polyleucine (polyLeu), polycysteine (polyCys), and polyglutamine (polyGln). The toxic potential of individual CAG-derived RAN polypeptides is not well understood. We developed pure C. elegans protein models for each CAG RAN polypeptide using codon-varied expression constructs that preserve RAN protein sequence but eliminate repetitive CAG/CUG RNA. While all RAN polypeptides formed aggregates, only polyLeu was consistently toxic across multiple cell types. In GABAergic neurons, which exhibit significant neurodegeneration in HD patients, codon-varied (Leu)38, but not (Gln)38, caused substantial neurodegeneration and motility defects. Our studies provide the first in vivo evaluation of CAG-derived RAN polypeptides and suggest that polyQ-independent mechanisms, such as RAN-translated polyLeu peptides, may have a significant pathological role in CAG repeat expansion disorders.

Abstract A hexanucleotide repeat expansion in the C9orf72 gene is the most common cause of inherited amyotrophic lateral sclerosis (ALS) and frontotemporal dementia (FTD). Unconventional translation of the C9orf72 repeat produces dipeptide repeat proteins (DPRs). Previously, we showed that the DPRs (PR)50 and (GR)50 are highly toxic when expressed in C. elegans and this toxicity depends on nuclear localization of the DPR. In an unbiased genome-wide RNAi screen for suppressors of (PR)50 toxicity, we identified 12 genes that consistently suppressed either the developmental arrest and/or paralysis phenotype evoked by (PR)50 expression. All of these genes have vertebrate homologs and 7/12 contain predicted nuclear localization signals. One of these genes was spop-1 , the C. elegans homolog of SPOP, a nuclear localized E3 ubiquitin ligase adaptor only found in metazoans. SPOP is also required for (GR)50 toxicity and functions in a genetic pathway that includes cul-3 , which is the canonical E3 ligase partner for SPOP. Genetic or pharmacological inhibition of SPOP in mammalian primary spinal cord motor neurons suppressed DPR toxicity without affecting DPR expression levels. Finally, we find that genetic inhibition of bet-1 , the C. elegans homolog of the known SPOP ubiquitination targets BRD2/3/4, suppresses the protective effect of SPOP mutations. Together, these data suggest a model in which SPOP promotes the DPR-dependent ubiquitination and degradation of BRD proteins. We speculate the pharmacological manipulation of this pathway, which is currently underway for multiple cancer subtypes, could also represent a novel entry point for therapeutic intervention to treat C9 FTD/ALS. Significance statement The G4C2 repeat expansion in the C9orf72 gene is a major cause of Fronto-Temporal Dementia (FTD) and Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS). Unusual translation of the repeat sequence produces two highly toxic dipeptide repeat proteins, PR X and GR X , which accumulate in the brain tissue of individuals with these diseases. Here, we show that PR and GR toxicity in both C. elegans and mammalian neurons depends on the E3 ubiquitin ligase adaptor SPOP. SPOP acts through the bromodomain protein BET-1 to mediate dipeptide toxicity. SPOP inhibitors, which are currently being developed to treat SPOP-dependent renal cancer, also protect neurons against DPR toxicity. Our findings identify a highly conserved and ‘druggable’ pathway that may represent a new strategy for treating these currently incurable diseases.