Significance The presence of heterogeneous subsets of cancer stem cells (CSCs) remains a clinical challenge. These subsets often occupy different regions in the primary tumor and have varied epithelial–mesenchymal phenotypes. Here, we devise a theoretical framework to investigate how the tumor microenvironment (TME) modulates this spatial patterning. We find that a spatial gradient of EMT-inducing signal, coupled with juxtacrine Notch-JAG1 signaling triggered by inflammatory cytokines in TME, explains this spatial heterogeneity. Finally, in vitro JAG1 knockdown in triple-negative breast cancer SUM149 cells severely restricts the growth of tumor organoid, hence validating the association between JAG1 and CSC fraction. Our results offer insights into principles of spatiotemporal patterning in TME and identify a relevant target to alleviate multiple CSC subsets: JAG1.

Abstract The Epithelial-Mesenchymal Transition (EMT) and Cancer Stem Cell (CSC) formation are two paramount processes driving tumor progression, therapy resistance and cancer metastasis. Some recent experiments show that cells with varying EMT and CSC phenotypes are spatially segregated in the primary tumor. The underlying mechanisms generating such spatiotemporal dynamics and heterogeneity in the tumor micro-environment, however, remain largely unexplored. Here, we show through a mechanism-based dynamical model that the diffusion of EMT-inducing signals such as TGF-β in a tumor tissue, together with non-cell autonomous control of EMT and CSC decision-making via juxtacrine signaling mediated via the Notch signaling pathway, can explain experimentally observed disparate localization of subsets of CSCs with varying EMT states in the tumor. Our simulations show that the more mesenchymal CSCs lie at the invasive edge, while the hybrid epithelial/mesenchymal (E/M) CSCs reside in the tumor interior. Further, motivated by the role of Notch-Jagged signaling in mediating EMT and stemness, we investigated the microenvironmental factors that promote Notch-Jagged signaling. We show that many inflammatory cytokines that can promote Notch-Jagged signaling such as IL-6 can (a) stabilize a hybrid E/M phenotype, (b) increase the likelihood of spatial proximity of hybrid E/M cells, and (c) expand the fraction of CSCs. To validate the predicted connection between Notch-Jagged signaling and stemness, we knocked down JAG1 in hybrid E/M SUM149 human breast cancer cells in vitro . JAG1 knockdown significantly restricted organoid formation, confirming the key role that Notch-Jagged signaling can play in tumor progression. Together, our integrated computational-experimental framework reveals the underlying principles of spatiotemporal dynamics of EMT and CSCs in the tumor microenvironment. Significance statement The presence of heterogeneous subsets of cancer stem cells (CSCs) remains a clinical challenge. These subsets often occupy different regions in the primary tumor and have varied epithelial-mesenchymal phenotypes. Here, we device a theoretical framework to investigate how the tumor microenvironment (TME) modulates this spatial patterning. We find that a spatial gradient of EMT-inducing signal, coupled with juxtacrine Notch-JAG1 signaling triggered by inflammatory cytokines in TME, explains this spatial heterogeneity. Finally, in vitro JAG1 knockdown experiments in triple negative breast cancer cells severely restricts the growth of tumor organoid, hence validating the association between JAG1 and CSC fraction. Our results offer insights into principles of spatiotemporal patterning in TME, and identifies a relevant target to alleviate multiple CSC subsets – JAG1.

Abstract The cerebral cortex contains billions of neurons, and their disorganization or misspecification leads to neurodevelopmental disorders. Understanding how the plethora of projection neuron subtypes are generated by cortical neural stem cells (NSCs) is a major challenge. Here, we focused on elucidating the transcriptional landscape of murine embryonic NSCs, basal progenitors (BPs) and newborn neurons (NBNs) throughout cortical development. We uncover dynamic shifts in transcriptional space over time, and heterogeneity within each progenitor population. We identified signature hallmarks of NSC, BP and NBN clusters, and predict active transcriptional nodes and networks that contribute to neural fate specification. We find that the expression of receptors, ligands and downstream pathway components is highly dynamic over time and throughout the lineage implying differential responsiveness to signals. Thus, we provide an expansive compendium of gene expression during cortical development that will be an invaluable resource for studying neural developmental processes and neurodevelopmental disorders.

A central problem in developmental biology is to understand how cells interpret their positional information to give rise to spatial patterns, such as the process of periodic segmentation of the vertebrate embryo into somites. For decades, somite formation has been interpreted according to the clock-and-wavefront model. In this conceptual framework, molecular oscillators set the frequency of somite formation while the positional information is encoded in signaling gradients. Recent experiments using ex vivo explants have challenged this interpretation, suggesting that positional information is encoded in the properties of the oscillators, independent of long-range modulations such as signaling gradients. Here, we propose that positional information is encoded in the difference in the levels of neighboring oscillators. The differences gradually increase because both the amplitude and the period of the oscillators increase with time. When this difference exceeds a certain threshold, the segmentation program starts. Using this framework, we quantitatively fit experimental data from in vivo and ex vivo mouse segmentation, and propose mechanisms of somite scaling. Our results suggest a novel mechanism of spatial pattern formation based on the local interactions between dynamic molecular oscillators.

Metastases claim more than 90% of cancer-related deaths and are usually seeded by a subset of circulating tumor cells (CTCs) shed off from the primary tumor. In circulation, CTCs are found both as single cells and as clusters of cells. The clusters of cells, although many fewer in number, possess much higher metastatic potential as compared to that of individual CTCs. In this review, we highlight recent insights into molecular mechanisms that can enable formation of these clusters - (a) hybrid epithelial-mesenchymal (E/M) phenotype of cells that couples their ability to migrate and adhere, and (b) intercellular communication that can spatially coordinate the cluster formation and provide survival signals to cancer cells. Building upon these molecular mechanisms, we also offer a possible mechanistic understanding of why clusters are endowed with a higher metastatic potential. Finally, we discuss the highly aggressive Inflammatory Breast Cancer (IBC) as an example of a carcinoma that can metastasize via clusters and corroborates the proposed molecular mechanisms.

How time is measured by neural stem cells during temporal neurogenesis has remained unresolved. By combining experiments and computational modelling, we here define a Shh/Gli-driven three-node timer underlying the sequential generation of motor neurons (MNs) and serotonergic neurons in the brainstem. The timer is founded on temporal decline of Gli-activator and Gli-repressor activities established through downregulation of Gli transcription. The circuitry conforms an incoherent feedforward loop, whereby Gli proteins promote expression of Phox2b and thereby MN-fate, but also account for a delayed activation of a self-promoting Tgfβ-node triggering a fate switch by repressing Phox2b. Hysteresis and spatial averaging by diffusion of Tgfβ counteracts noise and increases temporal accuracy at the population level. Our study defines how time is reliably encoded during the sequential specification of neurons.

Notch signalling controls cell differentiation and proliferation in many tissues. The Notch signal is generated by the interaction between the Notch receptor of one cell with the Notch ligand (Delta or Jagged) of a neighbouring cell. Therefore, the pathway requires cell-cell contact in order to be active. During organ development, cell differentiation occurs concurrently with tissue growth and changes in cell morphology. How growth impacts on Notch signalling and cell differentiation remains poorly understood. Here, we developed a modelling environment to simulate Notch signalling in a growing tissue. We use our model to simulate the differentiation process of pancreatic progenitor cells. Our results suggest that Notch-mediated differentiation in the developing pancreas is first mediated by geometric effects that result in loss of Notch signalling on the tissue boundary, leading to the differentiation of tip versus trunk cells. A second wave of differentiation further happens in the trunk cells due to a reduction in the expression of the ligand Jagged, which has been shown to be controlled by signalling factors secreted from the surrounding mesenchyme. Our results bring new insights into how cells coordinate tissue growth with cell fate specification during organ development.

ABSTRACT The brain is the most complex organ in mammals and understanding the origin of this complexity is a major challenge for developmental biologists. Crucial to the size and morphology of the cortex is the timing and transition of neural stem cell (NSC) fate. An interesting candidate for modulating and fine tuning these processes is the transcriptional regulator Ski, a protooncogene expressed in cortical cells. Ski is involved in diverse cellular processes and epigenetic programs, and mice deficient in Ski exhibit complex central nervous system defects that resemble some of the features observed in patients with 1p36 deletion syndrome and Shprintzen–Goldberg syndrome. Here, we took advantage of in vivo transgenic labeling and next-generation sequencing to analyze the gene expression profiles of NSCs, basal progenitor (BP) cells, and newborn neurons (NBNs) from wildtype and Ski-deficient embryos throughout cortical development. We created a unique database that allowed us to identify and compare signaling pathways and transcriptional networks within each progenitor population in the presence and absence of Ski. We find that NSCs are the most affected cell population and uncover that mutant NSCs fail to switch to a gliogenic fate in time. We show that Ski functions in concert with the Bone Morphogenetic Protein (BMP) signaling pathway to alter the cell differentiation fate of NSCs from neurons to glia, which is key to generating adequate numbers of specific cell types during corticogenesis. Thus, by combining genetic tools and bioinformatic analysis, our work not only deepens the knowledge of how Ski functions in the brain, but also provides an immense resource for studying neurodevelopmental disorders.

Long-term tissue homeostasis requires a precise balance between stem cell self-renewal and the generation of differentiated progeny. Recently, it has been shown that in the adult murine brain, neural stem cells (NSCs) divide mostly symmetrically. This finding suggests that the required balance for tissue homeostasis is accomplished at the population level. However, it remains unclear how this balance is enabled. Furthermore, there is experimental evidence that proneural differentiation factors not only promote differentiation, but also cell cycle progression, suggesting a link between the two processes in NSCs. To study the effect of such a link on NSC dynamics, we developed a stochastic model in which stem cells have an intrinsic probability to progress through cell cycle and to differentiate. Our results show that increasing heterogeneity in differentiation probabilities leads to a decreased probability of long-term tissue homeostasis, and that this effect can be compensated when cell cycle progression and differentiation are positively coupled. Using single-cell RNA-Seq profiling of adult NSCs, we found a positive correlation in the expression levels of cell cycle and differentiation markers. Our findings suggest that a coupling between cell cycle progression and differentiation on the cellular level is part of the process that maintains tissue homeostasis in the adult brain.

Neural stem cells (NSCs) in the adult hippocampal dentate gyrus (DG) can be quiescent or proliferative, but how they are maintained is largely unknown. With age DG NSCs become increasingly dormant, which impinges on neuron generation. We addressed how NSC activity is controlled and found that Notch2 promotes quiescence by regulating their transition to the activated state. Notch2-ablation induces cell cycle genes and markers of active NSCs. Conversely, quiescent NSC-associated genes, including Id4, are down regulated after Notch2 deletion. We found that Notch2 binds the Id4 promoter and positively regulates transcription. Similar to Notch2, Id4 overexpression promotes DG NSC quiescence and Id4 knockdown rescues proliferation, even when Notch2 signaling is activated. We show that Notch2 regulates age-dependent DG NSC dormancy and Notch2 inhibition rejuvenates neurogenesis in the DG of aged mice. Our data indicate that a Notch2-Id4 axis promotes adult DG NSC quiescence and dormancy.