Two glucocorticoid response elements (GREs) located 2.5 kb upstream of the transcription initiation site of the tyrosine aminotransferase gene were identified by gene transfer experiments and shown to bind to purified glucocorticoid receptor. Although the proximal GRE has no inherent capacity by itself to stimulate transcription, when present in conjunction with the distal GRE, this element synergistically enhances glucocorticoid induction of gene expression. Cooperativity of the two GREs is maintained when they are transposed upstream of a heterologous promoter. An oligonucleotide of 22 bp representing the distal GRE is sufficient to confer glucocorticoid inducibility. As evidenced by the mapping of DNAase I hypersensitive sites, local alterations in the structure of chromatin at the GREs take place as a consequence of hormonal treatment.

A collection of functionally characterized BAC transgenic mouse lines in which the channelrhodopsin-2 H134R variant is specifically and stably expressed in GABAergic, cholinergic, serotonergic or parvalbumin-positive neurons is reported. Optogenetic methods have emerged as powerful tools for dissecting neural circuit connectivity, function and dysfunction. We used a bacterial artificial chromosome (BAC) transgenic strategy to express the H134R variant of channelrhodopsin-2, ChR2(H134R), under the control of cell type–specific promoter elements. We performed an extensive functional characterization of the newly established VGAT-ChR2(H134R)-EYFP, ChAT-ChR2(H134R)-EYFP, Tph2-ChR2(H134R)-EYFP and Pvalb(H134R)-ChR2-EYFP BAC transgenic mouse lines and demonstrate the utility of these lines for precisely controlling action-potential firing of GABAergic, cholinergic, serotonergic and parvalbumin-expressing neuron subsets using blue light. This resource of cell type–specific ChR2(H134R) mouse lines will facilitate the precise mapping of neuronal connectivity and the dissection of the neural basis of behavior.

Hippocampal oscillations arise from coordinated activity among distinct populations of neurons and are associated with cognitive functions and behaviors. Although much progress has been made toward identifying the relative contribution of specific neuronal populations in hippocampal oscillations, far less is known about the role of hippocampal area CA2, which is thought to support social aspects of episodic memory. Furthermore, the little existing evidence on the role of CA2 in oscillations have led to conflicting conclusions. Therefore, we sought to identify the specific contribution of CA2 pyramidal neurons to brain oscillations using a controlled experimental system. We used excitatory and inhibitory DREADDs in transgenic mice to acutely and reversibly manipulate CA2 pyramidal cell activity. Here, we report on the role of CA2 in hippocampal-prefrontal cortical network oscillations and social behavior. We found that excitation or inhibition of CA2 pyramidal cell activity bidirectionally regulated hippocampal and prefrontal cortical low gamma oscillations and inversely modulated hippocampal ripple oscillations. Further, CA2 inhibition impaired social approach behavior. These findings support a role for CA2 in low gamma generation and ripple modulation within the hippocampus and underscore the importance of CA2 neuronal activity in extrahippocampal oscillations and social behavior.