Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) is a globally prevalent contagious disease caused by the positive-strand RNA PRRS virus (PRRSV), resulting in substantial economic losses in the swine industry. Modifying the CD163 SRCR5 domain, either through deletion or substitution, can eff1ectively confer resistance to PRRSV infection in pigs. However, large fragment modifications in pigs inevitably raise concerns about potential adverse effects on growth performance. Reducing the impact of genetic modifications on normal physiological functions is a promising direction for developing PRRSV-resistant pigs. In the current study, we identified a specific functional amino acid in CD163 that influences PRRSV proliferation. Viral infection experiments conducted on Marc145 and PK-15

Classical swine fever (CSF) caused by classical swine fever virus (CSFV) is among the most detrimental diseases, and leads to significant economic losses in the swine industry. Despite efforts by many government authorities try to stamp out the disease from national pig populations, the disease remains widespread. Here, antiviral small hairpin RNAs (shRNAs) were selected and then inserted at the porcine ROSA26 (pROSA26) locus via a CRISPR/Cas9-mediated knock-in strategy. Finally, anti-CSFV transgenic (TG) pigs were produced by somatic nuclear transfer (SCNT). Importantly, in vitro and in vivo viral challenge assays demonstrated that these TG pigs could effectively limit the growth of CSFV and reduced CSFV-associated clinical signs and mortality, and the disease resistance was stably transmitted to F1-generation. The use of these TG pigs can improve the well-being of livestock and substantially reduce virus-related economic losses. Additionally, this antiviral approach may provide a reference for future antiviral research.

Abstract Classical swine fever virus (CSFV), pathogen of classic swine fever, has caused severe economic losses worldwide. Poly (rC)-binding protein 1 (PCBP1), interacting with N pro of CSFV, plays a vital role in CSFV growth. Here, our research is the first report to generate PCBP1 knockout pigs via gene editing technology. The PCBP1 knockout pigs exhibited normal birth weight, reproductive-performance traits, and developed normally. Viral challenge results indicated that primary cells isolated from F 0 and F 1 generation pigs could significantly reduce CSFV infection. Additional mechanism exploration further confirmed that PCBP1 KO mediated antiviral effect is related with the activation of type I interferon. Beyond showing that gene editing strategy can be used to generate PCBP1 KO pigs, our study introduces a valuable animal model for further investigating infection mechanisms of CSFV that help to develop better antiviral solution. Importance As a negative regulator in immune modulation, the effects of PCBP1 on viral replication have been found to be valuable. Here, this study was the first report to generate PCBP1 knockout pigs with normal pregnancy rate and viability. Primary cells isolated from F 0 and F 1 generation PCBP1 knockout pigs could significantly reduce CSFV infection. The PCBP1 knockout pigs could be used as a natural host models for investigating the effects of PCBP1-mediating critical interactions on viral replication and helping to develop better antiviral solution.