SUMMARY The neural computational power is determined by neuroenergetics, but how and which energy substrates are allocated to various forms of memory engram is unclear. To solve this question, we asked whether neuronal fueling by glucose or lactate scales differently upon increasing neural computation and cognitive loads. Here, using electrophysiology, two-photon imaging, cognitive tasks and mathematical modeling, we show that both glucose and lactate are involved in engram formation, with lactate supporting long-term synaptic plasticity evoked by high stimulation load activity patterns and high attentional load in cognitive tasks, and glucose being sufficient for less demanding neural computation and learning tasks. Overall, these results demonstrate that glucose and lactate metabolisms are differentially engaged in neuronal fueling depending on the complexity of the activity-dependent plasticity and behavior. One sentence summary Neuronal fueling by lactate versus glucose scales differently according to engram level and memory load.

Abstract Progress in neuroscience research hinges on technical advances in visualizing living brain tissue with high fidelity and facility. Current neuroanatomical imaging approaches either require tissue fixation, do not have cellular resolution or only give a fragmented view. Here, we show how regular light microscopy together with fluorescence labeling of the interstitial fluid in the extracellular space provide comprehensive optical access in real-time to the anatomical complexity and dynamics of living brain tissue.

Odor memories are exceptionally robust and essential for animal survival. The olfactory (piriform) cortex has long been hypothesized to encode odor memories, yet the cellular substrates for olfactory learning and memory remain unknown. Here, using intersectional, cFos-based genetic manipulations ('Fos-tagging'), we show that olfactory fear conditioning activates sparse and distributed ensembles of neurons in mouse piriform cortex. We demonstrate that chemogenetic silencing of these Fos-tagged piriform ensembles selectively interferes with odor fear memory retrieval, but does not compromise basic odor detection and discrimination. Furthermore, chemogenetic reactivation of piriform neurons that were Fos-tagged during olfactory fear conditioning causes a decrease in exploratory behavior, mimicking odor-evoked fear memory recall. Together, our experiments identify odor-specific ensembles of piriform neurons as necessary and sufficient for odor fear memory recall.

Astrocytes express a complex repertoire of intracellular Ca2+ transients (events) that represent a major form of signaling within individual cells and in the astrocytic syncytium. These events have different spatiotemporal profiles, which are modulated by neuronal activity. Spontaneous Ca2+ events appear more frequently in distal astrocytic processes and independently from each other. However, little is known about the mechanisms underlying such subcellular distribution of the Ca2+ events. Here we identify the initiation points of the Ca2+ events within the territory of single astrocytes expressing genetically encoded Ca2+ indicator GCaMP2 in culture or in hippocampal slices. We found that most of the Ca2+ events start in thin distal processes. Our mathematical model demonstrated that a high surface-to-volume (SVR) of the thin processes leads to increased amplitude of baseline Ca2+ fluctuations caused by a stochastic opening of Ca2+ channels in the plasma membrane. Suprathreshold fluctuations trigger Ca2+-induced Ca2+ release (CICR) from the Ca2+ stores by activating inositol 1,4,5-trisphosphate (IP3) receptors. In agreement with the model prediction, the spontaneous Ca2+ events frequency depended on the extracellular Ca2+ concentration. Astrocytic depolarization by high extracellular K+ increased the frequency of the Ca2+ events through activation of voltage-gated Ca2+ channels (VGCC) in cultured astrocytes. Our results suggest that the morphological profile of the astrocytic processes is responsible for tuning of the Ca2+ event frequency. Therefore, the structural plasticity of astrocytic processes can be directly translated into changes in astrocytic Ca2+ signaling. This may be important for both physiological and pathological astrocyte remodeling.

The brain extracellular matrix (ECM) is a proteoglycan complex that occupies the extracellular space between brain cells and regulates brain development, brain wiring, and synaptic plasticity. However, the action of the ECM on synaptic plasticity remains controversial. Here, we employed serial section electron microscopy to show that enzymatic attenuation of ECM with chondroitinase ABC (ChABC) triggers the appearance of new glutamatergic synapses onto thin dendritic spines of CA1 pyramidal neurons. The appearance of new synapses increased the ratio of the field excitatory postsynaptic potential (fEPSP) to presynaptic fiber volley (PrV), suggesting that these new synapses are formed on existing axonal fibers. However, both the mean miniature excitatory postsynaptic current (mEPSC) amplitude and AMPA/NMDA ratio were decreased, suggesting that ECM attenuation increased the proportion of 'unpotentiated' synapses. A higher proportion of unpotentiated synapses would be expected to promote long-term potentiation (LTP). Surprisingly, theta-burst induced LTP was suppressed by ChABC treatment. The suppression of LTP was accompanied by decreased excitability of CA1 pyramidal neurons due to the upregulation of small conductance Ca2+-activated K+ (SK) channels. A pharmacological blockade of SK channels restored cell excitability and, expectedly, enhanced LTP above the level of control. This enhancement of LTP was abolished by a blockade of Rho-associated protein kinase (ROCK), which is involved in the maturation of dendritic spines. Thus, ECM attenuation enables the appearance of new synapses in the hippocampus, which is compensated for by a reduction in the excitability of postsynaptic neurons, thereby preventing network overexcitation at the expense of synaptic plasticity.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.

Abstract Glutamatergic transmission prompts K + efflux through postsynaptic NMDA receptors. K + depolarizes local presynaptic terminals, boosting glutamate release, but whether it also affecting glutamate uptake remains unknown. Here, we find that the pharmacological blockade, or conditional knockout, of NMDA receptors suppresses the progressive use‐ dependent increase in the amplitude and decay time of the astrocytic glutamate transporter current (I GluT ), whereas blocking the astrocytic inward‐rectifying K + channels prevents the decay time increase only. Glutamate spot‐uncaging reveals that local astrocyte depolarization, rather than extracellular K + rises on their own, reduces the amplitude and prolong the decay of I GluT . Biophysical simulations confirm that local transient elevations of extracellular K + can inhibit local glutamate uptake in fine astrocytic processes. Optical glutamate sensor imaging and a two‐pathway test relate postsynaptic K + efflux to enhanced extrasynaptic glutamate signaling. Thus, postsynaptic K + efflux facilitates presynaptic release while reducing local glutamate uptake.

Synaptic plasticity is triggered by different patterns of neuronal network activity. Network activity leads to an increase in ambient GABA concentration and tonic activation of GABAA receptors. How tonic GABAA conductance affects synaptic plasticity during temporal and rate-based coding is poorly understood. Here, we show that tonic GABAA conductance differently affects long-term potentiation (LTP) induced by different stimulation patterns. The LTP based on a temporal spike - EPSP order (spike-timing-dependent [st] LTP) was not affected by exogenous GABA application. Backpropagating action potential, which enables Ca2+ entry through N-methyl-D-aspartate receptors (NMDARs) during stLTP induction, was only slightly reduced by the tonic conductance. In contrast, GABA application impeded LTP dependent on spiking rate (theta-burst-induced [tb] LTP) by reducing the EPSP bust response and, hence, NMDAR-mediated Ca2+ entry during tbLTP induction. Our results may explain the changes in different forms of memory under physiological and pathological conditions that affect tonic GABAA conductance.

The dorsal striatum exhibits bidirectional corticostriatal synaptic plasticity, NMDAR- and endocannabinoids-(eCB)-mediated, necessary for the encoding of procedural learning. Therefore, characterizing factors controlling corticostriatal plasticity is of crucial importance. Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) and its receptor, the tropomyosine receptor kinase-B (TrkB), shape striatal functions and their dysfunction deeply affects basal ganglia. BDNF/TrkB signaling controls NMDAR-plasticity in various brain structures including the striatum. However, despite cross-talk between BDNF and eCBs, the role of BDNF in eCB-plasticity remains unknown. Here, we show that BDNF/TrkB signaling promotes eCB-plasticity (LTD and LTP) induced by rate-based (low-frequency stimulation) or spike-timing-based (spike-timing-dependent plasticity, STDP) paradigm in striatum. We show that TrkB activation is required for the expression and the scaling of both eCB-LTD and eCB-LTP. Using two-photon imaging of dendritic spines combined with patch-clamp recordings, we show that TrkB activation prolongs intracellular calcium transients, thus increasing eCB synthesis and release. We provide a mathematical model for the dynamics of the signaling pathways involved in corticostriatal plasticity. Finally, we show that TrkB activation enlarges the domain of expression of eCB-STDP. Our results reveal a novel role for BDNF/TrkB signaling in governing eCB-plasticity expression in striatum, and thus the engram of procedural learning.