LP
Ludmilla Plater
Author with expertise in Fertility Preservation in Cancer Patients
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
7
(57% Open Access)
Cited by:
584
h-index:
14
/
i10-index:
16
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

A New Model of Patient Tumor-Derived Breast Cancer Xenografts for Preclinical Assays

Elisabetta Marangoni et al.Jul 1, 2007
Abstract Purpose: To establish a panel of human breast cancer (HBC) xenografts in immunodeficient mice suitable for pharmacologic preclinical assays. Experimental Design: 200 samples of HBCs were grafted into Swiss nude mice. Twenty-five transplantable xenografts were established (12.5%). Their characterization included histology, p53 status, genetic analysis by array comparative genomic hybridization, gene expression by Western blotting, and quantitative reverse transcription-PCR. Biological profiles of nine xenografts were compared with those of the corresponding patient's tumor. Chemosensitivities of 17 xenografts to a combination of Adriamycin and cyclophosphamide (AC), docetaxel, trastuzumab, and Degarelix were evaluated. Results: Almost all patient tumors established as xenografts displayed an aggressive phenotype, i.e., high-grade, triple-negative status. The histology of the xenografts recapitulated the features of the original tumors. Mutation of p53 and inactivation of Rb and PTEN proteins were found in 83%, 30%, and 42% of HBC xenografts, respectively. Two HBCx had an ERBB2 (HER2) amplification. Large variations were observed in the expression of HER family receptors and in genomic profiles. Genomic alterations were close to those of original samples in paired tumors. Three xenografts formed lung metastases. A total of 15 of the 17 HBCx (88%) responded to AC, and 8 (47%) responded to docetaxel. One ERBB2-amplified xenograft responded to trastuzumab, whereas the other did not. The drug response of HBC xenografts was concordant with that of the patient's tumor in five of seven analyzable cases. Conclusions: This panel of breast cancer xenografts includes 15 triple-negative, one ER positive and 2 ERBB2 positive. This panel represents a useful preclinical tool for testing new agents and protocols and for further exploration of the biological basis of drug responses.
0

Multiscale analysis of single and double maternal-zygotic Myh9 and Myh10 mutants during mouse preimplantation development

Markus Schliffka et al.Sep 10, 2020
Abstract During the first days of mammalian development, the embryo forms the blastocyst, the structure responsible for implanting the mammalian embryo. Consisting of an epithelium enveloping the pluripotent inner cell mass and a fluid-filled lumen, the blastocyst results from a series of cleavages divisions, morphogenetic movements and lineage specification. Recent studies identified the essential role of actomyosin contractility in driving the morphogenesis, fate specification and cytokinesis leading to the formation of the blastocyst. However, the preimplantation development of contractility mutants has not been characterized. Here, we generated single and double maternal-zygotic mutants of non-muscle myosin-II heavy chains (NMHC) to characterize them using multiscale imaging. We find that Myh9 (NMHC II-A) is the major NMHC during preimplantation development as its maternal-zygotic loss causes failed cytokinesis, increased duration of the cell cycle, weaker embryo compaction and reduced differentiation, whereas Myh10 (NMHC II-B) maternal-zygotic loss is much less severe. Double maternal-zygotic mutants for Myh9 and Myh10 show a much stronger phenotype, failing most attempts of cytokinesis. We find that morphogenesis and fate specification are affected but nevertheless carry on in a timely fashion, regardless of the impact of the mutations on cell number. Strikingly, even when all cell divisions fail, the resulting single-celled embryo can initiate trophectoderm differentiation and lumen formation by accumulating fluid in increasingly large vacuoles. Therefore, contractility mutants reveal that fluid accumulation is a cell-autonomous process and that the preimplantation program carries on independently of successful cell division.
0
Citation2
0
Save
84

Ectopic activation of the polar body extrusion pathway triggers cell fragmentation in preimplantation embryos

Diane Pelzer et al.Dec 23, 2022
Abstract Cell fragmentation occurs during physiological processes, such as apoptosis, migration, or germ cell development. Fragmentation is also commonly observed during preimplantation development of human embryos and is associated with poor implantation prognosis during Assisted Reproductive Technology (ART) procedures. Despite its biological and clinical relevance, the mechanisms leading to cell fragmentation are unclear. Light sheet microscopy imaging of mouse embryos reveals that compromised spindle anchoring, due to Myo1c knockout or dynein inhibition, leads to fragmentation. We further show that defective spindle anchoring brings DNA in close proximity to the cell cortex, which, in stark contrast to previous reports in mitotic cells, locally triggers actomyosin contractility and pinches off cell fragments. The activation of actomyosin contractility by DNA in preimplantation embryos is reminiscent of the signals mediated by small GTPases throughout polar body extrusion (PBE) during meiosis. By interfering with the signals driving PBE, we find that this meiotic signaling pathway remains active during cleavage stages and is both required and sufficient to trigger fragmentation. Together, we find that fragmentation happens in mitosis after ectopic activation of actomyosin contractility by signals emanating from DNA, similar to those observed during meiosis. Our study uncovers the mechanisms underlying fragmentation in preimplantation embryos and, more generally, offers insight into the regulation of mitosis during the maternal-zygotic transition.
84
Citation2
0
Save
1

Zygotic contractility awakening during mouse preimplantation development

Özge Özgüç et al.Jul 11, 2021
Abstract Actomyosin contractility is a major engine of preimplantation morphogenesis, which starts at the 8-cell stage during mouse embryonic development. Contractility becomes first visible with the appearance of periodic cortical waves of contraction (PeCoWaCo), which travel around blastomeres in an oscillatory fashion. How contractility of the mouse embryo becomes active remains unknown. We have taken advantage of PeCoWaCo to study the awakening of contractility during preimplantation development. We find that PeCoWaCo become detectable in most embryos only after the 2 nd cleavage and gradually increase their oscillation frequency with each successive cleavage. To test the influence of cell size reduction during cleavage divisions, we use cell fusion and fragmentation to manipulate cell size across a 20-60 μ m range. We find that the stepwise reduction in cell size caused by cleavage divisions does not explain the presence of PeCoWaCo or their accelerating rhythm. Instead, we discover that blastomeres gradually decrease their surface tensions until the 8-cell stage and that artificially softening cells enhances PeCoWaCo prematurely. Therefore, during cleavage stages, cortical softening awakens zygotic contractility before preimplantation morphogenesis.
0

Mechanical strengthening of cell-cell adhesion during mouse embryo compaction

Ludmilla Plater et al.Jan 1, 2023
Compaction is the first morphogenetic movement of the eutherian mammals and involves a developmentally regulated adhesion process. Previous studies investigated cellular and mechanical aspects of compaction. During mouse and human compaction, cells spread onto each other as a result of a contractility-mediated increase in surface tension pulling at the edges of their cell-cell contacts. However, how compaction may affect the mechanical stability of cell-cell contacts remains unknown. Here, we used a dual pipette aspiration assay on cell doublets to quantitatively analyze the mechanical stability of compacting mouse embryos. We measured increased mechanical stability of contacts with rupture forces growing from 40 to 70 nN, which was highly correlated with cell-cell contact expansion. Analyzing the dynamic molecular reorganization of cell-cell contacts, we find minimal recruitment of the cell-cell adhesion molecule Cdh1 (also known as E-cadherin) to contacts but we observe its reorganization into a peripheral adhesive ring. However, this reorganization is not associated with increased effective bond density, contrary to previous reports in other adhesive systems. Using genetics, we reduce the levels of Cdh1 or replace it with a chimeric adhesion molecule composed of the extracellular domain of Cdh1 and the intracellular domain of Cdh2 (also known as N-cadherin). We find that reducing the levels of Cdh1 impairs the mechanical stability of cell-cell contacts due to reduced contact growth, which nevertheless show higher effective bond density than WT contacts of similar size. On the other hand, chimeric adhesion molecules cannot form large or strong contacts indicating that the intracellular domain of Cdh2 is unable to reorganize contacts and/or is mechanically weaker than the one of Cdh1 in mouse embryos. Together, we find that mouse embryo compaction mechanically strengthens cell-cell adhesion via the expansion of Cdh1 adhesive rings that maintain pre-compaction levels of effective bond density.