Abstract The scant ability of cardiomyocytes to proliferate makes heart regeneration one of the biggest challenges of science. Current therapies do not contemplate heart re-muscularization. In this scenario, stem cell-based approaches have been proposed to overcome the lack of regeneration. We hypothesize PluriCell hiPSC-derived cardiomyocytes (hiPSC-CMs) could enhance rat’s cardiac function after myocardial infarction (MI). Animals were subjected to permanent occlusion of the Left-Ventricle (LV) anterior descending coronary artery (LAD). Seven days after MI, Early-stage hiPSC-CMs were injected intramyocardially. Rats were subjected to Echocardiography pre- and post-treatment. Thirty days after injections, treated rats displayed 6.2% human cardiac grafts, which were characterized molecularly. Left ventricle ejection fraction (LVEF) was improved by 7.8% in cell-injected rats, while placebo controls showed an 18.2% deterioration. Also, cell-treated rats displayed a 92% and 56% increase in radial and circumferential strains, respectively. Human cardiac grafts maturate in situ, preserving proliferation with 10% Ki67 and 3% PHH3 positive nuclei. Grafts were perfused by host vasculature with no evidence for immune rejection nor ectopic tissue formations. Our findings support PluriCell hiPSC-CMs as an alternative therapy to treat MI. The next steps of preclinical development include efficacy studies in large animals on the path to clinical-grade regenerative therapy targeting human patients.

Abstract Coronavirus disease 2019 (COVID-19) was initially described as a viral infection of the respiratory tract. It is now known, however, that several other organs are affected, including the brain. Neurological manifestations such as stroke, encephalitis, and psychiatric conditions have been reported in COVID-19 patients, but the neurotropic potential of the virus is still debated. Herein, we sought to investigate SARS-CoV-2 infection in human neural cells. We demonstrated that SARS-CoV-2 infection of neural tissue is non-permissive, however, it can elicit inflammatory response and cell damage. These findings add to the hypothesis that most of the neural damage caused by SARS-CoV-2 infection is due to a systemic inflammation leading to indirect harmful effects on the central nervous system despite the absence of local viral replication.

Objectives To validate a straightforward single-cell passaging cultivation method that enables high-quality maintenance of hiPSC without the appearance of karyotypic abnormalities or loss of pluripotency.Methods Cells were kept in culture for over 50 passages, following a structured chronogram of passage and monitoring cell growth by population doubling time (PDT) calculation and cell confluence. Standard procedures for iPSC monitoring as embryonic body (EB) formation, karyotyping and pluripotency markers expression were evaluated in order to monitor the cellular state in the long-term culture. Cells that underwent these tests were then subjected to differentiation into keratinocytes and cardiomyocytes to evaluate its differentiation capacity.Results hiPSC clones maintained its pluripotent capability as well as chromosomal integrity and were able to generate derivatives from the three germ layers at high passages by embryoid body formation and high-efficient direct differentiation into keratinocytes and cardiomyocytes.Conclusion Our findings support the routine of hiPSC single-cell passaging as a reliable procedure even after long-term cultivation, providing healthy PSCs to be used in drugs discovery, toxicity and disease modeling as well as for therapeutic approaches.

Abstract Coronavirus disease 2019 (COVID-19) is caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), which can infect several organs, especially impacting respiratory capacity. Among the extrapulmonary manifestations of COVID-19 is myocardial injury, which is associated with a high risk of mortality. Myocardial injury, caused directly or indirectly by SARS-CoV-2 infection, can be triggered by inflammatory processes that cause damage to the heart tissue. Since one of the hallmarks of severe COVID-19 is the “cytokine storm”, strategies to control inflammation caused by SARS-CoV-2 infection have been considered. Cannabinoids are known to have anti-inflammatory properties by negatively modulating the release of pro-inflammatory cytokines. Herein, we investigated the effects of the cannabinoid agonist WIN 55,212-2 (WIN) in human iPSC-derived cardiomyocytes (hiPSC-CMs) infected with SARS-CoV-2. WIN did not modify angiotensin-converting enzyme II protein levels, nor reduced viral infection and replication in hiPSC-CMs. On the other hand, WIN reduced the levels of interleukins 6, 8, 18 and tumor necrosis factor-alpha (TNF-α) released by infected cells, and attenuated cytotoxic damage measured by the release of lactate dehydrogenase (LDH). Our findings suggest that cannabinoids should be further explored as a complementary therapeutic tool for reducing inflammation in COVID-19 patients.