Comprehensive libraries of plasmids for SARS-CoV-2 proteins with various tags (e.g. Strep, HA, Turbo) are now available. They enable the identification of numerous potential protein-protein interactions between the SARS-CoV-2 virus and host proteins. To facilitate further cellular investigations, notably by imaging techniques, we present here a large library of SARS CoV-2 protein constructs fused with green and red fluorescent proteins and their initial characterization in various human cell lines including lung epithelial cell models (A549, BEAS-2B), as well as in budding yeast. The localization of a few SARS-CoV-2 proteins matches their proposed interactions with host proteins. These include the localization of Nsp13 to the centrosome, Orf3a to late endosomes, and Orf9b to mitochondria.

Nitrated fatty acids (NO2-FAs) are formed by the addition reaction of nitric oxide- and nitrite-derived nitrogen dioxide with unsaturated fatty acids. Nitrated fatty acids act as signaling molecules in mammals through the formation of covalent adducts with cellular thiols. The study of NO2-FAs in plant systems constitutes an interesting and emerging area. The presence of NO2-FA has been reported in olives, peas, rice and in Arabidopsis. To gain a better understanding of the role of NO2-FA on plant physiology, we analyzed the effects of exogenous application of nitro-oleic acid (NO2-OA) to tomato cell cultures. We found that NO2-OA induced reactive oxygen species (ROS) production in a dose-dependent manner via activation of NADPH oxidases, which requires calcium entry from the extracellular compartment and protein kinase activation, a mechanism that resembles the plant defense responses. NO2-OA induced ROS production, expression of plant defense genes and led to cell death. The mechanism of action of NO2-OA involves a reduction in the glutathione cellular pool and covalently addition reactions with protein thiols and reduced glutathione. Altogether, these results indicate that NO2-OA triggers responses associated with plant defense, revealing its possible role as a signal molecule in biotic stress.

Osh6 and Osh7 are lipid transfer proteins (LTPs) that move phosphatidylserine (PS) from the endoplasmic reticulum (ER) to the plasma membrane (PM). High PS level at the PM is key for many cellular functions. Intriguingly, Osh6/7 localize to ER-PM contact sites, although they lack membrane-targeting motifs, in contrast to multidomain LTPs that both bridge membranes and convey lipids. We show that Osh6 localization to contact sites depends on its interaction with the cytosolic tail of the ER-PM tether Ist2, a homologue of TMEM16 proteins. We identify a motif in the Ist2 tail, conserved in yeasts, as the Osh6-binding region, and we map an Ist2-binding surface on Osh6. Mutations in the Ist2 tail phenocopy osh6Δ osh7Δ deletion: they decrease cellular PS levels, and block PS transport to the PM. Our study unveils an unexpected partnership between a TMEM16-like protein and a soluble LTP, which together mediate lipid transport at contact sites.