Bat Genomes Bats are of great interest because of their ability to fly and as hosts for infectious disease. Zhang et al. (p. 456 , published online 20 December) sequenced the genomes of two distantly related bat species, David's Myotis and Black flying fox. Analysis of the two genomes revealed likely changes that accompanied the evolution of bats, including selection for increased expression of genes involved in the oxidative phosphorylation pathway needed to generate the energy required for flight. Furthermore, while some immune genes have been lost, others are under positive selection, which may potentially explain bats' status as viral reservoirs.

ABSTRACT The global COVID-19 pandemic caused by SARS-CoV-2 has resulted in over 2.2 million deaths. Disease outcomes range from asymptomatic to severe with, so far, minimal genotypic change to the virus so understanding the host response is paramount. Transcriptomics has become incredibly important in understanding host-pathogen interactions; however, post-transcriptional regulation plays an important role in infection and immunity through translation and mRNA stability, allowing tight control over potent host responses by both the host and the invading virus. Here we apply ribosome profiling to assess post-transcriptional regulation of host genes during SARS-CoV-2 infection of a human lung epithelial cell line (Calu-3). We have identified numerous transcription factors (JUN, ZBTB20, ATF3, HIVEP2 and EGR1) as well as select antiviral cytokine genes, namely IFNB1, IFNL1,2 and 3, IL-6 and CCL5, that are restricted at the post-transcriptional level by SARS-CoV-2 infection and discuss the impact this would have on the host response to infection. This early phase restriction of antiviral transcripts in the lungs may allow high viral load and consequent immune dysregulation typically seen in SARS-CoV-2 infection.

ABSTRACT The human protein-coding gene ILRUN (inflammation and lipid regulator with UBA-like and NBR1-like domain, previously C6orf106) is a recently-characterised inhibitor of the transcription regulators p300 and CREB-binding protein (CBP). Here we have utilised RNA-seq to define cellular pathways regulated by ILRUN in the context of severe acute respiratory syndrome-associated coronavirus-2 (SARS-CoV-2) infection. We find that inhibition of ILRUN expression increases cellular expression of several members of the renin-angiotensin aldosterone system (RAAS), including the SARS-CoV-2 entry receptor angiotensin converting enzyme 2 (ACE2). Furthermore, inhibition of ILRUN results in increased SARS-CoV-2 replication. These data identify ILRUN as a novel inhibitor of SARS-CoV-2 replication and represents, to our knowledge, the first report of ILRUN as a regulator of the RAAS. SIGNIFICANCE STATEMENT There is no doubt that the current rapid global spread of COVID-19 has had significant and far-reaching impacts on our health and economy and will continue to do so. Research in emerging infectious diseases, such as severe acute respiratory syndrome-associated coronavirus (SARS-CoV-2), is growing rapidly, with new breakthroughs in the understanding of host-virus interactions and the development of innovative and exciting therapeutic strategies and new knowledge and tools to better protect against the impacts of disease. The human protein-coding gene ILRUN is a recently-characterised inhibitor of the transcription regulators p300 and CREB-binding protein (CBP). Here we present the first evidence that ILRUN modulation has implications for SARS-CoV-2 infections. Virus infectivity assays confirmed that gene silencing of ILRUN had a proviral effect and increased SARS-CoV-2 replication, whilst over-expression of ILRUN inhibited SARS-CoV-2 production. Additionally, we observed that ILRUN also regulates the expression of key elements of the RAAS. These data have important implications for the development of antiviral strategies to deal with the current SARS-CoV-2 pandemic.

Current prophylactic and therapeutic strategies targeting human influenza viruses include vaccines and antivirals. Given variable rates of vaccine efficacy and antiviral resistance, alternative strategies are urgently required to improve disease outcomes. Here we describe the use of HiSeq deep sequencing to analyze host gene expression in primary human alveolar epithelial type II cells infected with highly pathogenic avian influenza H5N1 virus. At 24 hours post-infection, 623 host genes were significantly up-regulated, including the cell adhesion molecule CEACAM1. The up-regulation of CEACAM1 was blocked in the presence of the reactive oxygen species inhibitor, apocynin. H5N1 virus infection stimulated significantly higher CEACAM1 protein expression when compared to low pathogenic PR8 H1N1 virus, suggesting a key role for CEACAM1 in influenza virus pathogenicity. Furthermore, silencing of endogenous CEACAM1 resulted in reduced levels of proinflammatory cytokine/chemokine production, as well as reduced levels of virus replication following H5N1 infection. Our study provides evidence for the involvement of CEACAM1 in a clinically relevant model of H5N1 infection and may assist in the development of host-oriented antiviral strategies.