Prolonged symptom duration and disability are common in adults hospitalized with severe coronavirus disease 2019 (COVID-19). Characterizing return to baseline health among outpatients with milder COVID-19 illness is important for understanding the full spectrum of COVID-19-associated illness and tailoring public health messaging, interventions, and policy. During April 15-June 25, 2020, telephone interviews were conducted with a random sample of adults aged ≥18 years who had a first positive reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) test for SARS-CoV-2, the virus that causes COVID-19, at an outpatient visit at one of 14 U.S. academic health care systems in 13 states. Interviews were conducted 14-21 days after the test date. Respondents were asked about demographic characteristics, baseline chronic medical conditions, symptoms present at the time of testing, whether those symptoms had resolved by the interview date, and whether they had returned to their usual state of health at the time of interview. Among 292 respondents, 94% (274) reported experiencing one or more symptoms at the time of testing; 35% of these symptomatic respondents reported not having returned to their usual state of health by the date of the interview (median = 16 days from testing date), including 26% among those aged 18-34 years, 32% among those aged 35-49 years, and 47% among those aged ≥50 years. Among respondents reporting cough, fatigue, or shortness of breath at the time of testing, 43%, 35%, and 29%, respectively, continued to experience these symptoms at the time of the interview. These findings indicate that COVID-19 can result in prolonged illness even among persons with milder outpatient illness, including young adults. Effective public health messaging targeting these groups is warranted. Preventative measures, including social distancing, frequent handwashing, and the consistent and correct use of face coverings in public, should be strongly encouraged to slow the spread of SARS-CoV-2.

Descriptions of coronavirus disease 2019 (COVID-19) in the United States have focused primarily on hospitalized patients. Reports documenting exposures to SARS-CoV-2, the virus that causes COVID-19, have generally been described within congregate settings, such as meat and poultry processing plants (1) and long-term care facilities (2). Understanding individual behaviors and demographic characteristics of patients with COVID-19 and risks for severe illness requiring hospitalization can inform efforts to reduce transmission. During April 15-May 24, 2020, telephone interviews were conducted with a random sample of adults aged ≥18 years who had positive reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) test results for SARS-CoV-2 in outpatient and inpatient settings at 11 U.S. academic medical centers in nine states. Respondents were contacted 14-21 days after SARS-CoV-2 testing and asked about their demographic characteristics, underlying chronic conditions, symptoms experienced on the date of testing, and potential exposures to SARS-CoV-2 during the 2 weeks before illness onset (or the date of testing among those who did not report symptoms at the time of testing). Among 350 interviewed patients (271 [77%] outpatients and 79 [23%] inpatients), inpatients were older, more likely to be Hispanic and to report dyspnea than outpatients. Fewer inpatients (39%, 20 of 51) reported a return to baseline level of health at 14-21 days than did outpatients (64%, 150 of 233) (p = 0.001). Overall, approximately one half (46%) of patients reported known close contact with someone with COVID-19 during the preceding 2 weeks. This was most commonly a family member (45%) or a work colleague (34%). Approximately two thirds (64%, 212 of 333) of participants were employed; only 35 of 209 (17%) were able to telework. These findings highlight the need for screening, case investigation, contact tracing, and isolation of infected persons to control transmission of SARS-CoV-2 infection during periods of community transmission. The need for enhanced measures to ensure workplace safety, including ensuring social distancing and more widespread use of cloth face coverings, are warranted (3).

Abstract Background Research on mosquito-microbe interactions may lead to new tools for mosquito and mosquito-borne disease control. To date, such research has largely utilized laboratory-reared mosquitoes that typically lack the microbial diversity of wild populations. A logical progression in this area involves working under controlled settings using field-collected mosquitoes or, in most cases, their progeny. Thus, an understanding of how laboratory colonization affects the assemblage of mosquito microbiota would aid in advancing mosquito microbiome studies and their applications beyond laboratory settings. Methods Using high throughput 16S rRNA amplicon sequencing, we characterized the internal and cuticle surface microbiota of F 1 progeny of wild-caught adult Anopheles albimanus from four locations in Guatemala. A total of 132 late instar larvae and 135 2-5day old, non-blood-fed virgin adult females that were reared under identical laboratory conditions, were pooled (3 individuals/pool) and analyzed. Results Results showed geographical heterogeneity in both F 1 larval internal ( p =0.001; pseudo- F = 9.53) and cuticle surface ( p =0.001; pseudo- F = 8.51) microbiota, and only F 1 adult cuticle surface ( p =0.001; pseudo- F = 4.5) microbiota, with a more homogenous adult internal microbiota ( p =0.12; pseudo- F = 1.6) across collection sites. Overall, ASVs assigned to Leucobacter, Thorsellia, Chryseobacterium and uncharacterized Enterobacteriaceae , dominated F 1 larval internal microbiota, while Acidovorax, Paucibacter , and uncharacterized Comamonadaceae , dominated the larval cuticle surface. F 1 adults comprised a less diverse microbiota compared to larvae, with ASVs assigned to the genus Asaia dominating both internal and cuticle surface microbiota, and constituting at least 70% of taxa in each microbial niche. Conclusions These results suggest that location-specific heterogeneity in filed mosquito microbiota can be transferred to F 1 progeny under normal laboratory conditions, but this may not last beyond the F 1 larval stage without adjustments to maintain field-derived microbiota. Our findings provide the first comprehensive characterization of laboratory-colonized F 1 An. albimanus progeny from field-derived mothers. This provides a background for studying how parentage and environmental conditions differentially or concomitantly affect mosquito microbiome composition, and how this can be exploited in advancing mosquito microbiome studies and their applications beyond laboratory settings.

A deeper understanding of the mechanisms underlying insecticide resistance is needed to mitigate its threat to malaria vector control. Building upon our earlier identified associations between mosquito microbiota and insecticide resistance, we demonstrate for the first time, type-specific effects of pyrethroid exposure on internal and cuticle surface bacteria in adult progeny of field-collected Anopheles albimanus. In contrast, larval cuticle surface--but not internal--bacteria were affected by pyrethroid exposure. Being over five-folds more abundant in pyrethroid resistant adults, as compared to susceptible or non-insecticide-exposed mosquitoes, Klebsiella (alphacypermethrin), Pantoea and Asaia (permethrin) were identified as potential markers of pyrethroid resistance in An. albimanus. We also show for the first time that An. albimanus larvae and adult cuticles harbor more diverse bacterial communities than their internal microbial niches. Our findings indicate insecticide selection pressures on mosquito microbiota, and support the hypothesis of an undescribed microbe-mediated mechanism of insecticide metabolism in mosquitoes.