Summary Cell migration frequently involves the formation of lamellipodia induced by Rac GTPases mediating activation of WAVE Regulatory Complex (WRC) driving Arp2/3 complex-dependent actin assembly. Previous genome editing studies solidified the view of an essential, linear pathway employing aforementioned components. Using disruption of the WRC subunit Nap1 and its paralogue Hem1 followed by serum and growth factor stimulation or expression of active GTPases now revealed a pathway to formation of Arp2/3 complex-dependent, lamellipodia-like structures (LLS) that require both Rac and Cdc42, but not WRC. These observations were independent of WRC subunit eliminated and coincided with the lack of recruitment of Ena/VASP family actin polymerases. Moreover, aside from the latter, induced LLS contained all common lamellipodial regulators tested, including cortactin, the Ena/VASP ligand lamellipodin or FMNL subfamily formins. Our studies thus establish the existence of a signaling axis to Arp2/3 complex-dependent actin remodeling at the cell periphery operating without WRC and Ena/VASP.

Abstract SMER28 (Small molecule enhancer of Rapamycin 28) is an autophagy-inducing compound functioning by a hitherto unknown mechanism. Here we confirm its autophagy-inducing effect by assessing classical autophagy-related parameters. Interestingly, we also discovered several additional effects of SMER28, including growth retardation and reduced G1 to S phase progression. Most strikingly, SMER28 treatment led to a complete arrest of receptor tyrosine kinase signaling, and consequently growth factor-induced cell scattering and dorsal ruffle formation. This coincided with a dramatic reduction of phosphorylation patterns of PI3K downstream effectors. Consistently, SMER28 directly inhibited PI3Kδ and to a lesser extent p110γ. The biological relevance of our observations was underscored by interference of SMER28 with InlB-mediated host cell entry of Listeria monocytogenes , which requires signaling through the prominent receptor typrosine kinase c-Met. This effect was signaling-specific, since entry of unrelated, gram-negative Salmonella Typhimurium was not inhibited.

The hematopoietic-specific protein 1 (Hem1) comprises an essential subunit of the WAVE Regulatory Complex (WRC) in immune cells. WRC has a fundamental role in Arp2/3 complex activation and the protrusion of branched actin networks in motile cells. Hem1 deficiency leads to suppression of the entire WRC in immune cells. Defective WRC function in macrophages results in loss of lamellipodia and migration defects. Moreover, phagocytosis, commonly accompanied by lamellipodium protrusion during cup formation, is altered in Hem1 null cells concerning frequency and efficacy. When analyzing cell spreading, adhesion and podosome formation, we found that Hem1 null cells are capable, in principle, of podosome formation and consequently, do not show any quantitative differences in extracellular matrix degradation. Their adhesive behavior, however, was significantly altered. Specifically, adhesion as well as de-adhesion of Hem1 null cells was strongly compromised, likely contributing to the observed reduced efficiency of phagocytosis. In line with this, phosphorylation of the prominent adhesion component paxillin was diminished. Nonhematopoietic somatic cells disrupted in expression for both Hem1 and its ubiquitous orthologue Nckassociated protein 1 (Nap1) or the essential WRC components Sra-1/PIR121 did not only confirm defective paxillin phosphorylation, but also revealed that paxillin turnover in focal adhesions is accelerated in the absence of WRC. Finally, adhesion assays using platelets lacking functional WRC as model system unmasked radically decreased αIIbβ3 integrin activation. Our results thus demonstrate that WRC-driven actin networks impact on integrin-dependent processes controlling formation and dismantling of different types of cell-substratum adhesion.