In patients with prostate cancer, the duration of remission after treatment with androgen deprivation therapies (ADTs) varies dramatically. Clinical experience has demonstrated difficulties in predicting individual risk for progression due to chemoresistance. Drug combinations that inhibit androgen biosynthesis (e.g., abiraterone acetate) and androgen signaling (e.g., enzalutamide or apalutamide) have proven so effective that new forms of ADT resistance are emerging. In particular, prostate cancers with a neuroendocrine transcriptional signature, which demonstrate greater plasticity, and potentially, increased predisposition to metastasize, are becoming more prevalent. Notably, these subtypes had in fact been relatively rare before the widespread success of novel ADT regimens. Therefore, better understanding of these resistance mechanisms and potential alternative treatments are necessary to improve progression-free survival for patients treated with ADT. Targeting the bromodomain and extra-terminal (BET) protein family, specifically BRD4, with newer investigational agents may represent one such option. Several families of chromatin modifiers appear to be involved in ADT resistance and targeting these pathways could also offer novel approaches. However, the limited transcriptional and genomic information on ADT resistance mechanisms, and a serious lack of patient diversity in clinical trials, demand profiling of a much broader clinical and demographic range of patients, before robust conclusions can be drawn and a clear direction established.

Abstract Subsets of Neurofibromatosis Type 1 (NF1)-associated solid tumors have been shown to display high frequencies of ATRX mutations and presence of alternative lengthening of telomeres (ALT). In addition, a potential biologic vulnerability of ALT-positive cancer cells is ATR inhibition, a regulator of homologous recombination. We studied the phenotype of combined NF1 and ATRX deficiency in malignant solid tumors. For these experiments, cell lines derived from NF1-deficient sporadic glioblastomas (U251, SF188), a NF1-associated ATRX mutant glioblastoma cell line (JHH-NF1-GBM1), a NF1-derived sarcoma cell line (JHH-CRC65), and two NF1-deficient MPNST cell lines (ST88-14, NF90.8) were utilized. Cancer cells were treated with ATR inhibitors (AZD6738 and VE-822), in vitro, with or without a MEK inhibitor (AZD6244, selumetinib) or temozolomide. In contrast to the glioma cell line SF188, combined ATRX knockout (KO) and TERC KO led to ALT-like properties and sensitized U251 glioma cells to ATR inhibition (AZD6738 and VE-822) in vitro and in vivo. In addition, ATR inhibitors sensitized U251 cells to temozolomide, but not MEK inhibition (AZD6244), irrespective of ATRX level manipulation; whereas, the JHH-NF1-GBM1 cell line (ATRX loss/ALT-positive) demonstrated sensitivity to ATR inhibition (AZD6738), but not temozolomide. Similar effects were noted using the MPNST cell line NF90.8 after combined ATRX knockdown and TERC KO; however, not in the MPNST cell line ST88-14. Taken together, our study supports the feasibility of targeting the ATR pathway in subsets of NF1-deficient and associated tumors. Tumors with pre-existing ALT, or that subsequently develop ALT after ATRX downregulation, are particularly vulnerable to this therapeutic approach.