Abstract COVID-19 is being extensively studied, and much remains unknown regarding the long-term consequences of the disease on immune cells. The different arms of the immune system are interlinked, with humoral responses and the production of high-affinity antibodies being largely dependent on T cell immunity. Here, we longitudinally explored the effect COVID-19 has on T cell populations and the virus-specific T cells, as well as neutralizing antibody responses, for 6-7 months following hospitalization. The CD8 + TEMRA and exhausted CD57 + CD8 + T cells were markedly affected with elevated levels that lasted long into convalescence. Further, markers associated with T-cell activation were upregulated at the inclusion, and in the case of CD69 + CD4 + T cells this lasted all through the study duration. The levels of T cells expressing negative immune checkpoint molecules were increased in COVID-19 patients and sustained for a prolonged duration following recovery. Within 2-3 weeks after symptom onset, all COVID-19 patients developed anti-nucleocapsid IgG and spike-neutralizing IgG as well as SARS-CoV-2-specific T cell responses. In addition, we found alterations in follicular T helper (TFH) cell populations, such as enhanced TFH-TH2 following recovery from COVID-19. Our study revealed significant and long-term alterations in T cell populations and key events associated with COVID-19 pathogenesis.

Abstract The Bunyavirales order of RNA viruses comprises emerging pathogens for which approved preventative or therapeutic measures for human use are not available. The genome of all Bunyavirales consists of negative-sense RNA segments wrapped by the virus-encoded nucleocapsid protein (NP) to form ribonucleoproteins (RNPs). RNPs represent the active template for RNA synthesis and the form in which the genome is packaged into virions, functions that require inherent flexibility. We present a pseudo-atomic model of a native RNP purified from Bunyamwera virus (BUNV), the prototypical Bunyavirales member, based on a cryo-electron microscopy (cryo-EM) average at 13 Å resolution with subsequent fitting of the BUNV NP crystal structure by molecular dynamics. We show the BUNV RNP possesses relaxed helical architecture, with successive helical turns separated by ∼18 Å. The model shows that adjacent NP monomers in the RNP chain interact laterally through flexible N- and C-terminal arms, with no helix-stabilizing interactions along the longitudinal axis. Instead, EM analysis of RNase-treated RNPs suggests their chain integrity is dependent on the encapsidated genomic RNA, thus providing the molecular basis for RNP flexibility. Overall, this work will assist in designing anti-viral compounds targeting the RNP and inform studies on bunyaviral RNP assembly, packaging and RNA replication. Significance Bunyaviruses are emerging RNA viruses that cause significant disease and economic burden and for which vaccines or therapies approved for human use do not exist. The bunyavirus genome does not exist as naked RNA; instead it is wrapped up by the nucleoprotein (NP) to form a ribonucleoprotein (RNP). Using the prototypical bunyavirus, Bunyamwera virus, we determined the 3D structure of the native RNP, revealing a helical architecture with NP molecules linked by lateral contacts only, with no helix-stabilizing longitudinal contacts. Instead, the RNA genome itself plays a role in maintaining the helical architecture, allowing a high degree of flexibility that is critical for several stages of the virus replication cycle, such as segment circularization and genome packaging into virions.

ABSTRACT After more than two years the COVID-19 pandemic continues to burden healthcare systems and economies worldwide, and it is evident that long-term effects of the disease can persist for months post-recovery in some individuals. The activity of myeloid cells such as monocytes and dendritic cells (DC) is essential for correct mobilization of the innate and adaptive responses to a pathogen. Impaired levels and responses of monocytes and DC to SARS-CoV-2 is likely to be a driving force behind the immune dysregulation that characterizes severe COVID-19. Here, we followed, for 6-7 months, a cohort of COVID-19 patients hospitalized during the early waves of the pandemic. The levels and phenotypes of circulating monocyte and DC subsets were assessed to determine both the early and long-term effects of the SARS-CoV-2 infection. We found increased monocyte levels that persisted for 6-7 months, mostly attributed to elevated levels of classical monocytes. While most DC subsets recovered from an initial decrease, we found elevated levels of cDC2/cDC3 at the 6-7 month timepoint. Analysis of functional markers on monocytes and DC revealed sustained reduction in PD-L1 expression but increased CD86 expression across almost all cell types examined. Finally, viral load and CRP correlated to the appearance of circulating antibodies and levels of circulating DC and monocyte subsets, respectively. By elucidating some of the long-term effects that SARS-CoV-2 infection has on these key innate myeloid cells, we have shed more light on how the immune landscape remains affected in the months following severe COVID-19.