Cancer is a complex disease, driven by aberrant activity in numerous signaling pathways in even individual malignant cells. Epigenetic changes are critical mediators of these functional changes that drive and maintain the malignant phenotype. Changes in DNA methylation, histone acetylation and methylation, non-coding RNAs, post-translational modifications are all epigenetic drivers in cancer, independent of changes in the DNA sequence. These epigenetic alterations, once thought to be crucial only for the malignant phenotype maintenance, are now recognized as critical also for disrupting essential pathways that protect the cells from uncontrolled growth, longer survival and establishment in distant sites from the original tissue. In this review, we focus on DNA methylation and chromatin structure in cancer. While associated with cancer, the precise functional role of these alterations is an area of active research using emerging high-throughput approaches and bioinformatics analysis tools. Therefore, this review describes these high-throughput measurement technologies, public domain databases for high-throughput epigenetic data in tumors and model systems, and bioinformatics algorithms for their analysis. Advances in bioinformatics data integration techniques that combine these epigenetic data with genomics data are essential to infer the function of specific epigenetic alterations in cancer, and are therefore also a focus of this review. Future studies using these emerging technologies will elucidate how alterations in the cancer epigenome cooperate with genetic aberrations to cause tumorigenesis initiation and progression. This deeper understanding is essential to future studies that will precisely infer patients prognosis and select patients who will be responsive to emerging epigenetic therapies.

Motivation: Current bioinformatics methods to detect changes in gene isoform usage in distinct phenotypes compare the relative expected isoform usage in phenotypes. These statistics model differences in isoform usage in normal tissues, which have stable regulation of gene splicing. Pathological conditions, such as cancer, can have broken regulation of splicing that increases the heterogeneity of the expression of splice variants. Inferring events with such differential heterogeneity in gene isoform usage requires new statistical approaches. Results: We introduce Splice Expression Variability Analysis (SEVA) to model increased heterogeneity of splice variant usage between conditions (e.g., tumor and normal samples). SEVA uses a rank-based multivariate statistic that compares the variability of junction expression profiles within one condition to the variability within another. Simulated data show that SEVA is unique in modeling heterogeneity of gene isoform usage, and benchmark SEVA's performance against EBSeq, DiffSplice, and rMATS that model differential isoform usage instead of heterogeneity. We confirm the accuracy of SEVA in identifying known splice variants in head and neck cancer and perform cross-study validation of novel splice variants. A novel comparison of splice variant heterogeneity between subtypes of head and neck cancer demonstrated unanticipated similarity between the heterogeneity of gene isoform usage in HPV-positive and HPV-negative subtypes and anticipated increased heterogeneity among HPV-negative samples with mutations in genes that regulate the splice variant machinery. Conclusion: These results show that SEVA accurately models differential heterogeneity of gene isoform usage from RNA-seq data. Availability: SEVA is implemented in the R/Bioconductor package GSReg.