The cellular mechanism of bioactivation underlying guanylate cyclase activation by organic nitrates was investigated. In cultured rat lung fibroblasts (RFL-6 cells), the inhibitor of cytochrome P-450 proadifen (0.1 mM) decreased cyclic GMP stimulation by glyceryl trinitrate (GTN, 1-100 microM) by up to 81%. Cyclic GMP stimulation by isoidide dinitrate was inhibited to a similar degree under these conditions. However, proadifen did not affect cyclic GMP stimulation by sodium nitroprusside that spontaneously releases nitric oxide. Cyclic GMP stimulation in RFL-6 cells by GTN remained unaltered in the presence of the inhibitor of glutathione S-transferase sulfobromophthalein. In the same cell type, a 24-hr pretreatment with the inducer of cytochrome P-450 3-methylcholanthrene (10 microM) augmented cyclic GMP stimulation by GTN or isoidide dinitrate by up to 102%. Cultured porcine aortic endothelial cells were found to be without a cyclic GMP response to GTN, although sodium nitroprusside produced a marked cyclic GMP elevation in these cells. The endothelial cells remained unresponsive to GTN even in the presence of N-acetylcysteine (5 mM). Moreover, in a cell-free preparation from rat liver, glutathione-dependent biotransformation of GTN was not accompanied by activation of soluble guanylate cyclase. These findings suggest that in intact cells bioactivation of, i.e., nitric oxide formation from organic nitrates is mediated by a cytochrome P-450 enzyme system rather than by glutathione S-transferase or free thiols.

Abstract Background To examine the impact on diagnosis, treatment and cost with early use of targeted whole-exome sequencing (WES) in early-onset epilepsy. Methods WES was performed on 50 patients with early-onset epilepsy (≤ 5 years) of unknown cause. Patients were classified as retrospective (epilepsy diagnosis > 6 months) or prospective (epilepsy diagnosis < 6 months). WES was performed on an Ion ProtonTM and variant reporting was restricted to the sequences of 565 known epilepsy genes. Diagnostic yield and time to diagnosis were calculated. An analysis of cost and impact on treatment was also performed. Results A likely/definite diagnosis was made in 17/50 patients (34%) with immediate treatment implications in 8/17 (47%). A possible diagnosis was identified in 9 additional patients (18%) for whom supporting evidence is pending. Time from epilepsy onset to genetic diagnosis was faster when WES was performed early in the diagnostic process (mean: 143 days prospective versus 2,172 days retrospective). Costs of prior negative tests averaged $8,344 in the retrospective group, suggesting savings of up to $5,110 per patient. Interpretation These results support the clinical utility and potential cost-effectiveness of using targeted WES early in the diagnostic workup of patients with unexplained early-onset epilepsy. The costs and clinical benefits are likely to continue to improve. Advances in precision medicine and further studies regarding impact on long-term clinical outcome will be important.