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Xiaojin Zhang
Author with expertise in Dendrimer-Encapsulated Nanoparticles and Hyperbranched Polymers
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pGlyco 2.0 enables precision N-glycoproteomics with comprehensive quality control and one-step mass spectrometry for intact glycopeptide identification

Mingqi Liu et al.Aug 30, 2017
The precise and large-scale identification of intact glycopeptides is a critical step in glycoproteomics. Owing to the complexity of glycosylation, the current overall throughput, data quality and accessibility of intact glycopeptide identification lack behind those in routine proteomic analyses. Here, we propose a workflow for the precise high-throughput identification of intact N-glycopeptides at the proteome scale using stepped-energy fragmentation and a dedicated search engine. pGlyco 2.0 conducts comprehensive quality control including false discovery rate evaluation at all three levels of matches to glycans, peptides and glycopeptides, improving the current level of accuracy of intact glycopeptide identification. The N-glycoproteome of samples metabolically labeled with 15N/13C were analyzed quantitatively and utilized to validate the glycopeptide identification, which could be used as a novel benchmark pipeline to compare different search engines. Finally, we report a large-scale glycoproteome dataset consisting of 10,009 distinct site-specific N-glycans on 1988 glycosylation sites from 955 glycoproteins in five mouse tissues.Protein glycosylation is a heterogeneous post-translational modification that generates greater proteomic diversity that is difficult to analyze. Here the authors describe pGlyco 2.0, a workflow for the precise one step identification of intact N-glycopeptides at the proteome scale.
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Visualizing in vitro-in vivo correlation of miktoarm copolymer nanomicelles in cancer cellular uptake and trafficking

Zheng Cui et al.Sep 5, 2019
Abstract In this study, a clear correlation between the in vitro and in vivo cellular uptake and trafficking was discovered by delivering miktoarm copolymer nanomicelles (MCNs) to cancer cells and tumor tissues. To monitor this process, two different FRET pairs, DiO and DiI, DiD and DiR, were loaded into MCNs to monitor the Förster resonance energy transfer (FRET) efficiency. The change in FRET efficiency in vitro and in vivo demonstrated a similar sequence of events for the transport of MCNs: hyperbranched block PCL inserted into cytomembrane, while the loaded hydrophobic fluorescence probes were released and followed by time-dependent intracellular clustering within endocytic vesicles. Additionally, uptake of loaded fluorescence probes with successively increasing ratios of copolymers suggested that with the increase of mass ratio of copolymer to fluorescence probes, cellular uptake of probes significantly decreased. This result was also consistent with the uptake behavior in cancer tissues. Collectively, the interaction between MCNs and cellular membrane dictated the uptake and trafficking of core-loaded hydrophobic probes. This concept paves a new way to analyze in vitro-in vivo correlation of other nanocarriers for endocytosis mechanism studies as well as further novel copolymers design in biomedical applications.
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