The basal core promoter (BCP) of hepatitis B virus (HBV) controls the transcription of both the precore RNA and the core RNA. The precore RNA codes for the secreted e antigen, while the core RNA codes for the major core protein and the DNA polymerase and also is the pregenomic RNA. The double mutation of nucleotides 1762 and 1764 in the BCP from A and G to T and A, respectively, is frequently observed in HBV sequences isolated from chronic patients. Several papers have reported conflicting results regarding whether this double mutation is important for e antigen expression. In order to address this issue, we have introduced this double mutation into the HBV genome and studied its effects on HBV gene expression and replication. Our results indicate that the mutated BCP can no longer bind a liver-enriched transcription factor(s) and that the transcription of only precore RNA and, consequently, the expression of e antigen were reduced. The reduction of precore gene expression was accompanied by an increase in progeny virus production. This increase was found to occur at or immediately prior to the encapsidation of the pregenomic RNA. Thus, the results of our in vitro study resolve the discrepancy of previous clinical observations and indicate that this double mutation suppresses but does not abolish the e antigen phenotype. The implications of these findings in the pathogenesis of HBV are discussed.

By diversifying antibody biological effector functions, class switch DNA recombination has a central role in the maturation of the antibody response. Here we show that BCR-signalling synergizes with Toll-like receptor (TLR) signalling to induce class switch DNA recombination. BCR-signalling activates the non-canonical NF-κB pathway and enhances the TLR-dependent canonical NF-κB pathway, thereby inducing activation-induced cytidine deaminase (AID), which is critical for class switch DNA recombination. Escherichia coli lipopolysaccharide (LPS) triggers dual TLR4/BCR-signalling and induces hallmarks of BCR-signalling, including CD79a phosphorylation and Ca2+ mobilization, and activates both the NF-κB pathways to induce AID and class switch DNA recombination in a PI(3)K p85α-dependent fashion. CD40-signalling activates the two NF-κB pathways to induce AID and class switch DNA recombination independent of BCR-signalling. Finally, dual BCR/TLR-engaging NP–lipopolysaccharide effectively elicits class-switched NP-specific IgG3 and IgG2b in mice. Thus, by integrating signals of the non-canonical and canonical NF-κB pathways, BCR and TLRs synergize to induce AID and T-cell-independent class switch DNA recombination. Class switch recombination diversifies antibody effector functions and requires expression of activation-induced cytidine deaminase (AID). In this study, ligation of the B-cell receptor and Toll-like receptors synergize to induce non-canonical NF-κB activation, AID expression and class switching recombination.

Abstract B cells are exposed to innate and T cell stimuli during the antibody response, although whether and how they functionally integrate such signals are unclear. Here we have identified IL-27 as the cytokine specifically produced by murine B cells upon sequential stimulation by TLR ligands and then CD154 and IL-21, the hallmark factors of T follicular helper cells, and during the T-dependent antibody response to a conjugated hapten or virus infection. B-cell Il27p28 transcription is concomitant with increased locus accessibility and depends on newly induced BATF3 transcription factor. IL-27-producing B cells are inefficient in antibody secretion, but cooperate with IFNγ to promote proliferation, survival, class-switching and plasma cell differentiation of CD40-activated B cells, leading to optimal IgG2a and IgG1 responses. Overall, IL-27-producing B cells function as “helper” B cells that integrate the innate and adaptive stages of the antibody response. One-sentence summary B cells integrate innate TLR and adaptive CD40 signals to induce BATF3 transcription factor for production of IL-27, which together with INFg optimizes antibody responses.

Abstract Of all gynecologic cancers, epithelial-ovarian cancer (OCa) stands out with the highest mortality rates. Despite all efforts, 90% of individuals who receive standard surgical and cytotoxic therapy experience disease recurrence. The precise mechanism by which leukemia inhibitory factor (LIF) and its receptor (LIFR) contribute to the progression of OCa remains unknown. Analysis of cancer databases revealed that elevated expression of LIF or LIFR was associated with poor progression-free survival of OCa patients and a predictor of poor response to chemotherapy. Using multiple primary and established OCa cell lines or tissues that represent five subtypes of epithelial-OCa, we demonstrated that LIF/LIFR autocrine signaling is active in OCa. Moreover, treatment with LIFR inhibitor, EC359 significantly reduced OCa cell viability and cell survival with an IC 50 ranging from 5-50 nM. Furthermore, EC359 diminished the stemness of OCa cells. Mechanistic studies using RNA-seq and rescue experiments unveiled that EC359 primarily induced ferroptosis by suppressing the glutathione antioxidant defense system. Using multiple in vitro, ex vivo and in vivo models including cell-based xenografts, patient-derived explants, organoids, and xenograft tumors, we demonstrated that EC359 dramatically reduced the growth and progression of OCa. Additionally, EC359 therapy considerably improved tumor immunogenicity by robust CD45 + leukocyte tumor infiltration and polarizing tumor-associated macrophages (TAMs) toward M1 phenotype while showing no impact on normal T-, B-, and other immune cells. Collectively, our findings indicate that the LIF/LIFR autocrine loop plays an essential role in OCa progression and that EC359 could be a promising therapeutic agent for OCa.

Humanized mice are limited in terms of modeling human immunity, particularly with regards to antibody responses. Here we constructed a humanized (THX) mouse by grafting non-γ-irradiated, genetically myeloablated Kit

Abstract SARS-CoV-2, the causative agent of COVID-19, has an RNA genome, which is, overall, closely related to the bat coronavirus sequence RaTG13. However, the ACE2-binding domain of this virus is more similar to a coronavirus isolated from a Guangdong pangolin. In addition to this unique feature, the genome of SARS-CoV-2 (and its closely related coronaviruses) has a low CpG content. This has been postulated to be the signature of an evolutionary pressure exerted by the host antiviral protein ZAP. Here, we analyzed the sequences of a wide range of viruses using both alignment-based and alignment free approaches to investigate the origin of SARS-CoV-2 genome. Our analyses revealed a high level of similarity between the 5’UTR of SARS-CoV-2 and that of the Guangdong pangolin coronavirus. This suggests bat and pangolin coronaviruses might have recombined at least twice (in the 5’UTR and ACE2 binding regions) to seed the formation of SARS-CoV-2. An alternative hypothesis is that the lineage preceding SARS-CoV-2 is a yet to be sampled bat coronavirus whose ACE2 binding domain and 5’UTR are distinct from other known bat coronaviruses. Additionally, we performed a detailed analysis of viral genome compositions as well as expression and RNA binding data of ZAP to show that the low CpG abundance in SARS-CoV-2 is not related to an evolutionary pressure from ZAP.

Abstract Group 2 innate lymphoid cells (ILC2) are emerging as a critical player in type 2 immunity at barrier sites in response to microbial infections and allergen exposures. Although their classical activators are known to be host epithelial-derived alarmin cytokines IL-33, IL-25 or TSLP, it remains elusive whether ILC2 cells can be activated by directly sensing microbial ligands via pattern-recognition receptors such as toll-like receptors (TLRs). Here we report that toll-like receptor 4 (TLR4) is a potent activating receptor of human ILC2. We found that among many microbial ligands examined, lipopolysaccharides (LPS) from multiple species of Gram-negative bacteria, was found to potently stimulate human, but not murine ILC2, to proliferate and produce massive amounts of type 2 effector cytokines IL-4, IL-5, and IL-13. LPS-activated ILC2 also had greatly enhanced the CD40 ligand (CD154) expression and were able to promote the proliferation and antibody production of human B cells in culture. In a humanized mouse model, LPS activated the adoptively transferred human ILC2 in mouse lungs. Both NF-kB and JAK pathways, but not the IL-33-ST2 pathway, were required for LPS to activate human ILC2. RNA-seq data further revealed that LPS induced a large set of genes overlapped significantly with those induced by IL-33. Collectively, these findings support a non-classical mode of activating human ILC2 cells via the LPS-TLR4 signaling axis. Thus, targeting TLR4 signaling pathway might be developed as a new approach by modulating ILC2 activation in treating various type 2 immunity-associated diseases.