Abstract Constitutively active estrogen receptor-α (ER/ ESR1 ) mutations have been identified in approximately one third of ER+ metastatic breast cancer. Although these mutations are known mediators of endocrine resistance, their potential role in promoting metastatic disease has not yet been mechanistically addressed. In this study, we show the presence of ESR1 mutations exclusively in distant, but not local recurrences. In concordance with transcriptomic profiling of ESR1 mutant tumors, genome-edited Y537S and D538G cell models have a reprogrammed cell adhesive gene network via alterations in desmosome/gap junction genes and the TIMP3/MMP axis, which functionally confers enhanced cell-cell contacts while decreased cell-ECM adhesion. Context-dependent migratory phenotypes revealed co-targeting of Wnt and ER as vulnerability. Mutant ESR1 exhibits non-canonical regulation of several metastatic pathways including secondary transactivation and de novo FOXA1-driven chromatin remodeling. Collectively, our data supports evidence for ESR1 mutation-driven metastases and provides insight for future preclinical therapeutic strategies. Significance Context and allele-dependent transcriptome and cistrome reprogramming in genome-edited ESR1 mutation cell models elicit diverse metastatic phenotypes, including but not limited to alterations in cell adhesion and migration. The gain-of-function mutations can be pharmacologically targeted, and thus may be key components of novel therapeutic treatment strategies for ER-mutant metastatic breast cancer.

ABSTRACT Activating estrogen receptor alpha (ER) mutations are present in primary endometrial and metastatic breast cancers, promoting estrogen-independent activation of the receptor. Functional characterizations in breast cancer have established unique molecular and phenotypic consequences of the receptor, yet the impact of ER mutations in endometrial cancer has not been fully explored. In this study, we used CRISPR-Cas9 to model the clinically prevalent ER-Y537S mutation and compared results to ER-D538G to discover allele-specific differences between ER mutations in endometrial cancer. We found that constitutive activity of mutant ER resulted in changes in the expression of thousands of genes, stemming from combined alterations to ER binding and chromatin accessibility. The unique gene expression programs resulted in ER mutant cells developing increased cancer associated phenotypes, including migration, invasion, anchorage independent growth, and growth in vivo . To uncover potential treatment strategies, we identified ER associated proteins via Rapid Immunoprecipitation and Mass Spectrometry of Endogenous Proteins (RIME) and interrogated two candidates, CDK9 and NCOA3. Inhibition of these regulatory proteins resulted in decreased growth and migration, representing potential novel treatment strategies for ER mutant endometrial cancer. Implications This study provides insight into mutant ER activity in endometrial cancer and identifies potential therapies for women with ER mutant endometrial cancer. STATEMENT OF SIGNIFICANCE Activating estrogen receptor alpha (ER) mutations promote ligand-independent activity of the receptor. This study evaluates ER-Y537S and ER-D538G mutations in primary endometrial cancer, revealing their effects on gene regulation and cancer-associated phenotypes. By identifying ER associated proteins, we also uncover potential novel treatments for women with ER mutant endometrial cancer.

Estrogen receptor 1 ( ESR1 ) mutations have been identified in hormone therapy resistant breast cancer and primary endometrial cancer. Analyses in breast cancer suggests that mutant ESR1 exhibits estrogen independent activity. In endometrial cancer, ESR1 mutations are associated with worse outcomes and less obesity, however experimental investigation of these mutations has not been performed. Using a unique CRISPR/Cas9 strategy, we introduced the D538G mutation, a common endometrial cancer mutation that alters the ligand binding domain of ESR1, while epitope tagging the endogenous locus. We discovered estrogen-independent mutant ESR1 genomic binding that is significantly altered from wildtype ESR1. The D538G mutation impacted expression, including a large set of non-estrogen regulated genes, and chromatin accessibility, with most affected loci bound by mutant ESR1. Mutant ESR1 is unique from constitutive ESR1 activity as mutant-specific changes are not recapitulated with prolonged estrogen exposure. Overall, D538G mutant ESR1 confers estrogen-independent activity while causing additional regulatory changes in endometrial cancer cells that are distinct from breast cancer cells.

While breast cancer patients with tumors that express estrogen receptor α (ER) generally respond well to hormone therapies that block ER's actions, a significant number relapse. Approximately 30% of these recurrences harbor activating mutations in ER's ligand binding domain (LBD). ER mutations have been shown to confer ligand-independent function to ER; however, much is still unclear regarding the effect of mutant ER beyond its estrogen independence. To investigate mutant ER's molecular effects, we developed multiple isogenic ER mutant cell lines for the most common ER LBD mutations, Y537S and D538G. We found that these mutations induce differential expression of thousands of genes, the majority of which are mutant allele-specific and are not observed upon estrogen treatment of wildtype cells. The mutant-specific genes show consistent differential expression across ER mutant lines developed in other laboratories. The observed gene expression changes cannot be explained by constitutive ER activity alone, as wildtype cells with long-term estrogen exposure only exhibit some of these transcriptional changes, suggesting that mutant ER causes novel regulatory effects that are not simply due to constant activity. While ER mutations have minor effects on ER genomic binding, with the exception of ligand independence, we observed substantial differences in chromatin accessibility due to ER mutations. Mutant ER is bound to approximately a quarter of mutant-enriched accessible regions that are enriched for other DNA binding factors including FOXA1, CTCF, and OCT1. Our findings indicate that mutant ER causes several consistent effects on gene expression both indirectly and through constant activity.### Competing Interest Statement

Abstract Estrogen receptor α (ER) mutations occur in up to 30% of metastatic ER-positive breast cancers. Recent data has shown that ER mutations impact the expression of thousands of genes not typically regulated by wildtype ER. While the majority of these altered genes can be explained by constant activity of mutant ER or genomic changes such as altered ER binding and chromatin accessibility, as much as 33% remain unexplained, indicating the potential for post-transcriptional effects. Here we explored the role of microRNAs in mutant ER-driven gene regulation and identified several microRNAs that are dysregulated in ER mutant cells. These differentially regulated microRNAs target a significant portion of mutant-specific genes involved in key cellular processes. When the activity of microRNAs is altered using mimics or inhibitors, significant changes are observed in gene expression and cellular proliferation related to mutant ER. An in-depth evaluation of miR-301b led us to discover an important role for PRKD3 in the proliferation of ER mutant cells. Our findings show that microRNAs contribute to mutant ER gene regulation and cellular effects in breast cancer cells.