Introductory Filoviruses are prime examples of emerging human pathogens that are transmitted to humans by zoonotic spillover events. Since their initial discovery, filovirus outbreaks have occured with increasing frequency and intensity. There is an urgent need to better understand their enzootic ecology and pathogenic potential, given recent zoonotic virus spillover events including the 2013-2016 West African Ebola virus (EBOV) epidemic. Several novel filoviruses have been discovered with a markedly wider geographic distribution than previously described. One of these novel filoviruses, Lloviu virus (LLOV), was first identified in 2002 in Schreiber’s bats ( Miniopterus schreibersii ) in Spain, Portugal, and southern France. Subsequently, in 2016, LLOV was detected during the passive monitoring of bats in Hungary. Here we report the first isolation of infectious Lloviu virus; from the blood of an asymptomatic Schreiber’s bat, subsequently cultivated in the Miniopterus sp. kidney cell line SuBK12-08. We also show that LLOV is able to infect monkey and human cells, suggesting that LLOV might have spillover potential. We performed a multi-year surveillance of LLOV and detected LLOV RNA in both deceased and asymptomatic live animals as well as in coupled ectoparasites from the families Nycteribiidae and Ixodidae. We present data on the natural infection and seropositivity of Schreiber’s bats and provide novel LLOV genomic sequence information from a bat host and an arthropod parasite. Our data support the role of bats, specifically Miniopterus schreibersii as natural reservoirs for the LLOV filovirus in Europe. We also suggest that bat-associated parasites might play a role in the natural ecology of filoviruses in temperate climate regions compared to filoviruses in the tropics. These results raise the possibility of cross-species transmission events via bat-human interactions.

Abstract Crimean-Congo hemorrhagic fever virus (CCHFV) is one of the prioritized diseases of World Health Organization, considering its potential to create a public health emergency and more importantly, the absence of efficacious drugs and/or vaccines regarding treatment. The highly lethal nature characteristic to CCHFV restricts research to BSL-4 laboratories, which complicates effective research and developmental strategies. In consideration of antiviral therapies, RNA interference can be used to suppress viral replication by targeting viral genes. RNA interference uses small interfering RNAs (siRNAs) to silence genes. The aim of our study was to design siRNAs that inhibit CCHFV replication and can serve as a basis for further antiviral therapies. A549 cells were infected with CCHFV after transfection with the siRNAs. Following 72 hours, nucleic acid from the supernatant was extracted for Droplet Digital PCR analysis. Among the investigated siRNAs we identified four effective candidates against all three segments of CCHF genome: one for the S and M segments, whilst two for the L segment. Consequently, blocking any segment of CCHFV leads to changes in the virus copy number that indicates an antiviral effect of the siRNAs in vitro . The most active siRNAs were demonstrated a specific inhibitory effect against CCHFV in a dose-dependent manner. In summary, we demonstrated the ability of specific siRNAs to inhibit CCHFV replication in vitro . This promising result can be used in future anti-CCHFV therapy developments.

Abstract Lloviu cuevavirus (LLOV) was the first identified member of Filoviridae family outside the Ebola and Marburgvirus genera. A massive die-off of Schreibers’ bent-winged bats ( Miniopterus schreibersii ) in the Iberian Peninsula in 2002 led to its discovery. Studies with recombinant and wild-type LLOV isolates confirmed the susceptibility of human-derived cell lines and primary human macrophages to LLOV infection in vitro . Based on these data, LLOV is now considered as a potential zoonotic virus with unknown pathogenicity to humans and bats. We examined bat samples from Italy for the presence of LLOV in an area outside of the currently known distribution range of the virus. We detected one positive sample from 2020, sequenced the complete coding sequence of the viral genome and established an infectious isolate of the virus. In addition, we performed the first comprehensive evolutionary analysis of the virus, using the Spanish, Hungarian and the Italian sequences. The most important achievement of this article is the establishment of an additional infectious LLOV isolate from a bat sample using the SuBK12-08 cells, demonstrating that this cell line is highly susceptible to LLOV infection. These results further confirms the role of these bats as the host of this virus, possibly throughout their entire geographic range. This is an important result to further understand the role of bats as the natural hosts for zoonotic filoviruses.