VV
Valentin Vetter
Author with expertise in Epigenetic Modifications and Their Functional Implications
Achievements
Open Access Advocate
Cited Author
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
3
(100% Open Access)
Cited by:
27
h-index:
9
/
i10-index:
9
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
2

Vitamin D supplementation is associated with slower epigenetic aging

Valentin Vetter et al.May 13, 2022
Adverse effects of low vitamin D level on mortality and morbidity are controversially discussed. Especially older people are at risk for vitamin D deficiency and therefore exposed to its potentially harmful consequences. A way of measuring differences in the biological age is through DNA methylation age (DNAm age) and its deviation from chronological age, DNAm age acceleration (DNAmAA). We previously reported on an association between vitamin D deficiency and higher 7-CpG DNAmAA in participants of the Berlin Aging Study II (BASE-II). In this study, we employ a quasi-interventional study design to assess the relationship between DNAmAA of five epigenetic clocks and vitamin D supplementation. Longitudinal data were available for 1,036 participants of BASE-II that were reexamined on average 7.4 years later in the GendAge study (mean age at follow-up: 75.6 years, SD = 3.8 years, age range: 64.9-94.1 years, 51.9% female). DNAmAA was estimated with the 7-CpG clock, Horvath's clock, Hannum's clock, PhenoAge, and GrimAge. Methylation data were obtained through methylation-sensitive single nucleotide primer extension (MS-SNuPE) or Illumina's Infinium "MethylationEPIC" array. Vitamin D-deficient participants who chose to start vitamin D supplementation after baseline examination showed a 2.6-year lower 7-CpG DNAmAA (p = 0.011) and 1.3-year lower Horvath DNAmAA (p = 0.042) compared to untreated and vitamin D-deficient participants. DNAmAA did not statistically differ between participants with successfully treated vitamin D deficiency and healthy controls (p > 0.16). Therefore, we conclude that intake of vitamin D supplement is associated with lower DNAmAA in participants with vitamin D deficiency.
2
Citation16
3
Save
4

Epigenetic aging and perceived psychological stress in old age

Valentin Vetter et al.Sep 26, 2022
Adverse effects of psychological stress on physical and mental health, especially in older age, are well documented. How perceived stress relates to the epigenetic clock measure, DNA methylation age acceleration (DNAmAA), is less well understood and existing studies reported inconsistent results. DNAmAA was estimated from five epigenetic clocks (7-CpG, Horvath's, Hannum's, PhenoAge and GrimAge DNAmAA). Cohen's Perceived Stress Scale (PSS) was used as marker of psychological stress. We analyzed data from 1,100 Berlin Aging Study II (BASE-II) participants assessed as part of the GendAge study (mean age = 75.6 years, SD = 3.8 years, 52.1% women). In a first step, we replicated well-established associations of perceived stress with morbidity, frailty, and symptoms of depression in the BASE-II cohort studied here. In a second step, we did not find any statistically significant association of perceived stress with any of the five epigenetic clocks in multiple linear regression analyses that adjusted for covariates. Although the body of literature suggests an association between higher DNAmAA and stress or trauma during early childhood, the current study found no evidence for an association of perception of stress with DNAmAA in older people. We discuss possible reasons for the lack of associations and highlight directions for future research.
4
Citation8
1
Save
1

Seven-CpG DNA Methylation Age determined by Single Nucleotide Primer Extension and Illumina’s Infinium MethylationEPIC array provide highly comparable results

Valentin Vetter et al.Aug 14, 2021
Abstract DNA methylation age (DNAm age, epigenetic clock) is a novel and promising biomarker of aging. It is calculated from the methylation fraction of specific cytosine phosphate guanine sites (CpG sites) of genomic DNA. Several groups have proposed epigenetic clock algorithms and these differ mostly regarding the number and location of the CpG sites considered and the method used to assess the methylation status. Most epigenetic clocks are based on a large number of CpGs, e.g. as measured by DNAm microarrays. We have recently evaluated an epigenetic clock based on the methylation fraction of seven CpGs that were determined by methylation-sensitive single nucleotide primer extension (MS-SNuPE). This method is more cost-effective when compared to array-based technologies as only a few CpGs need to be examined. However, there is only little data on the correspondence in epigenetic age estimation using the 7-CpG clock and other algorithms. To bridge this gap, in this study we measured the 7-CpG DNAm age using two methods, via MS-SNuPE and via the MethylationEPIC array, in a sample of 1,058 participants of the Berlin Aging Study II (BASE-II), assessed as part of the GendAge study. On average, participants were 75.6 years old (SD: 3.7, age range: 64.9 – 90.0, 52.6% female). Agreement between methods was assessed by Bland-Altman plots. DNAm age was highly correlated between methods (Pearson’s r=0.9) and Bland-Altman plots showed a difference of 3.1 years. DNAm age by the 7-CpG formula was 71.2 years (SD: 6.9 years, SNuPE) and 68.1 years (SD: 6.4 years, EPIC array). The mean of difference in methylation fraction between methods for the seven individual CpG sites was between 0.7 and 13 percent. To allow direct conversion between methods we developed an adjustment formula with a randomly selected training set of 529 participants using linear regression. After conversion of the Illumina data in a second and independent validation set, the adjusted DNAm age was 71.44 years (SD: 6.1 years, n=529). In summary, we found the results of DNAm clocks to be highly comparable. Furthermore, we developed an adjustment formula that allows for direct conversion of estimates between methods and enables one singular clock to be used in studies that employ either the Illumina or the SNuPE method.
1
Citation3
0
Save