Abstract Nanopore sensors could revolutionize single-molecule proteomics by providing a means for identification of known proteins through fingerprinting or by de novo sequencing. However, the complex chemical and physical properties of proteins present multiple challenges to the conventional nanopore sensing method, predominantly, the single-file threading of a protein chain into a nanopore and its transport through it. Herein we describe a general approach for realizing unidirectional transport of full-length proteins through nanopores. We show that the combination of a chemically resistant biological nanopore platform and a high concentration guanidinium chloride buffer enables protein unfolding and unidirectional transport through a pore, propelled by an electroosmotic effect that largely owes to the guanidinium chloride presence. The uniform and slow (~10 µs/amino acid) single-file transport, when combined with supervised machine learning of the electrical current signatures obtained, allows us to use to discern the protein threading orientation and identity. In conjunction with a method for tail-modification of native proteins and higher-resolution nanopores, our approach could offer a path towards direct single-molecule protein fingerprinting without the requirement of a motor enzyme.

Abstract Many small proteins move across cellular compartments through narrow pores. In order to thread a protein through a constriction, free energy must be overcome to either deform or completely unfold the protein. In principle, the diameter of the pore, along with the effective driving force for unfolding the protein, as well as its barrier to translocation, should be critical factors that govern whether the process proceeds via squeezing, unfolding/threading, or both. To probe this for a well-established protein system, we studied the electric-field-driven translocation behavior of cytochrome c (cyt c) through ultrathin silicon nitride (SiN x ) solid-state nanopores of diameters ranging from 1.5 to 5.5 nm. For a 2.5 nm diameter pore we find that, in a threshold electric field regime of ∼30-100 MV/m, cyt c is able to squeeze through the pore. As electric fields inside the pore are increased, the unfolded state of cyt c is thermodynamically stabilized, facilitating its translocation. In contrast, for 1.5 nm and 2.0 nm diameter pores, translocation occurs only by threading of the fully unfolded protein after it transitions through a higher energy unfolding intermediate state at the mouth of the pore. The relative energies between the metastable, intermediate, and unfolded protein states are extracted using a simple thermodynamic model that is dictated by the relatively slow (∼ms) protein translocation times for passing through the nanopore. These experiments map the various modes of protein translocation through a constriction, which opens new avenues for exploring protein folding structures, internal contacts, and electric field-induced deformability. Significance Statement Can localized electric fields drive the complete unfolding of a protein molecule? Protein unfolding prior to its translocation through a nanopore constriction is an important step in protein transport across biological membranes and also an important step in nanopore-based protein sequencing. We studied here the electric-field-driven translocation behavior of a model protein (cyt c) through nanopores of diameters ranging from 1.5 to 5.5 nm. These single molecule measurements show that electric fields at the nanopore constriction can select both partially and fully unfolded protein conformations. Zero-field free energy gaps between these conformations, found using a simple thermodynamic model, are in remarkable agreement with previously reported studies of cyt c unfolding energetics.

Selective transport of ions through nanometer-sized pores is fundamental to cell biology and central to many technological processes such as water desalination and electrical energy storage. Conventional methods for generating ion selectivity include placement of fixed electrical charges at the inner surface of a nanopore through either point mutations in a protein pore or chemical treatment of a solid-state nanopore surface, with each nanopore type requiring a custom approach. Here, we describe a general method for transforming a nanoscale pore into a highly selective, anion-conducting channel capable of generating a giant electro-osmotic effect. Our molecular dynamics simulations and reverse potential measurements show that exposure of a biological nanopore to high concentrations of guanidinium chloride renders the nanopore surface positively charged due to transient binding of guanidinium cations to the protein surface. A comparison of four biological nanopores reveals the relationship between ion selectivity, nanopore shape, composition of the nanopore surface, and electro-osmotic flow. Remarkably, guanidinium ions are also found to produce anion selectivity and a giant electro-osmotic flow in solid-state nanopores via the same mechanism. Our sticky-ion approach to generate electro-osmotic flow can have numerous applications in controlling molecular transport at the nanoscale and for detection, identification, and sequencing of individual proteins.