Gene regulation in embryonic stem cells (ESCs) has been extensively studied at the epigenetic-transcriptional levels, but not at the post-transcriptional levels. Pumilio (Pum) proteins are among the few known translational regulators required for stem cell maintenance in invertebrates and plants. Here we report the essential function of two murine Pum proteins, Pum1 and Pum2, in ESCs and early embryogenesis. Pum1/2 double mutants are developmentally delayed at the morula stage and lethal by embryonic day 8.5 (e8.5). Correspondingly, Pum1/2 double mutant ESCs display severely reduced self-renewal and differentiation, revealing the combined function of Pum1 and Pum2 in ESC pluripotency. Remarkably, Pum1-deficient ESCs show increased expression of pluripotency genes but not differentiation genes, indicating that Pum1 mainly promote differentiation; whereas Pum2-deficient ESCs show decreased expression of pluripotency genes and accelerated differentiation, indicating that Pum2 promotes self-renewal. Thus, Pum1 and Pum2 each uniquely contributes to one of the two complementary aspects of pluripotency. Furthermore, we show that Pum1 and Pum2 achieve ESC functions by forming a negative auto- and inter-regulatory feedback loop that directly regulates at least 1,486 mRNAs. Pum1 and Pum2 regulate target mRNAs not only by repressing translation as expected but also by promoting translation and enhancing or reducing mRNA stability of different target mRNAs. Together, these findings reveal the distinct roles of individual mammalian Pum proteins in ESCs and their collectively essential functions in ESC pluripotency and embryogenesis. Moreover, they demonstrate three novel modes of regulation of Pum proteins towards target mRNAs.

Alternative transcription initiation, which refers to the transcription of a gene from different transcription start sites (TSSs), is prevalent across metazoans and has important biological functions. Although transcriptional regulation has been extensively studied, the mechanism that selects one TSS over others within a gene remains elusive. Using the Cap Analysis of Gene Expression sequencing (CAGE-seq) method, we discovered that Piwi, an RNA-binding protein, regulates TSS usage in at least 87 genes. In piwi-deficient Drosophila ovaries, these genes displayed significantly altered TSS usage (ATU). The regulation of TSS usage occurred in both germline and somatic cells in ovaries, as well as in cultured ovarian somatic cells (OSCs). Correspondingly, RNA Polymerase II (Pol II) initiation and elongation at the TSSs of ATU genes were affected in germline-piwi-knockdown ovaries and piwi-knockdown OSCs. Furthermore, we identified a Facilitates Chromatin Transcription (FACT) complex component, Ssrp, that is essential for mRNA elongation, as a novel interactor of Piwi in the nucleus. Temporally controlled knockdown of ssrp affected TSS usage in ATU genes, whereas overexpression of ssrp partially rescued the TSS usage of ATU genes in piwi mutant ovaries. Thus, Piwi may interact with Ssrp to regulate TSS usage in Drosophila ovaries by affecting Pol II initiation and elongation.