Summary

 The PI3K-AKT-FoxO pathway is integral to lifespan regulation in lower organisms and essential for the stability of long-lived cells in mammals. Here, we report the impact of combined FoxO1, 3, and 4 deficiencies on mammalian brain physiology with a particular emphasis on the study of the neural stem/progenitor cell (NSC) pool. We show that the FoxO family plays a prominent role in NSC proliferation and renewal. FoxO-deficient mice show initial increased brain size and proliferation of neural progenitor cells during early postnatal life, followed by precocious significant decline in the NSC pool and accompanying neurogenesis in adult brains. Mechanistically, integrated transcriptomic, promoter, and functional analyses of FoxO-deficient NSC cultures identified direct gene targets with known links to the regulation of human brain size and the control of cellular proliferation, differentiation, and oxidative defense. Thus, the FoxO family coordinately regulates diverse genes and pathways to govern key aspects of NSC homeostasis in the mammalian brain.

Inactivation of tumour-suppressor genes by homozygous deletion is a prototypic event in the cancer genome, yet such deletions often encompass neighbouring genes. We propose that homozygous deletions in such passenger genes can expose cancer-specific therapeutic vulnerabilities when the collaterally deleted gene is a member of a functionally redundant family of genes carrying out an essential function. The glycolytic gene enolase 1 (ENO1) in the 1p36 locus is deleted in glioblastoma (GBM), which is tolerated by the expression of ENO2. Here we show that short-hairpin-RNA-mediated silencing of ENO2 selectively inhibits growth, survival and the tumorigenic potential of ENO1-deleted GBM cells, and that the enolase inhibitor phosphonoacetohydroxamate is selectively toxic to ENO1-deleted GBM cells relative to ENO1-intact GBM cells or normal astrocytes. The principle of collateral vulnerability should be applicable to other passenger-deleted genes encoding functionally redundant essential activities and provide an effective treatment strategy for cancers containing such genomic events. The ‘collateral’ homozygous deletion of essential redundant housekeeping genes in cancer genomes is shown to confer therapeutic vulnerability on cancer cells with the deletion, without affecting genomically intact normal non-cancerous cells, suggesting new therapeutic opportunities. This Article introduces the concept of 'collateral damage' in cancer genomes as a possible basis for therapeutic strategies. Ronald DePinho and colleagues examine pairs of functionally redundant 'passenger' genes with 'housekeeping' roles, for example in cellular metabolism. They hypothesize that genetic deletions in cancer that encompass one such gene (as collateral damage caused by proximity to tumour-suppressor genes) may expose a selective vulnerability of cancer cells, but not normal cells, to pharmacological inhibition of the protein encoded by the second gene. They demonstrate this concept for the glycolytic enzymes ENO1 and ENO2. There is often homozygous deletion of the ENO1 gene on chromosome 1p36 in glioblastomas, which is shown here to render glioma cells sensitive to knockdown of ENO2 or to a small-molecule enolase inhibitor. The authors further analyse existing cancer genomics data sets for other examples of pairs of redundant housekeeping genes, one of which resides close to frequently deleted tumour-suppressor genes. They suggest that this concept may be generally applicable and could offer new therapeutic opportunities.

Abstract Post-zygotic mutations incurred during DNA replication, DNA repair, and other cellular processes lead to somatic mosaicism. Somatic mosaicism is an established cause of various diseases, including cancers. However, detecting mosaic variants in DNA from non-cancerous somatic tissues poses significant challenges, particularly if the variants only are present in a small fraction of cells. Here, the Brain Somatic Mosaicism Network conducted a coordinated, multi-institutional study to: (i) examine the ability of existing methods to detect simulated somatic single nucleotide variants (SNVs) in DNA mixing experiments; (ii) generate multiple replicates of whole genome sequencing data from the dorsolateral prefrontal cortex, other brain regions, dura mater, and dural fibroblasts of a single neurotypical individual; (iii) devise strategies to discover somatic SNVs; and (iv) apply various approaches to validate somatic SNVs. These efforts led to the identification of 43 bona fide somatic SNVs that ranged in variant allele fractions from ~0.005 to ~0.28. Guided by these results, we devised best practices for calling mosaic SNVs from 250X whole genome sequencing data in the accessible portion of the human genome that achieve 90% specificity and sensitivity. Finally, we demonstrated that analysis of multiple bulk DNA samples from a single individual allows the reconstruction of early developmental cell lineage trees. Thus, this study provides a unified set of best practices to detect somatic SNVs in non-cancerous tissues. The data and methods are freely available to the scientific community and should serve as a guide to assess the contributions of somatic SNVs to neuropsychiatric diseases.