ABSTRACT Mutations in the RNA-binding protein (RBPs) FUS have been genetically associated with the motoneuron disease amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Using both human induced pluripotent stem cells and mouse models, we found that FUS-ALS causative mutations affect the activity of two relevant RBPs with important roles in neuronal RNA metabolism: HuD/ELAVL4 and FMRP. Mechanistically, mutant FUS leads to upregulation of HuD protein levels through competition with FMRP for HuD mRNA 3’UTR binding. In turn, increased HuD levels overly stabilize the transcript levels of its targets, NRN1 and GAP43. As a consequence, mutant FUS motoneurons show increased axon branching and growth upon injury, which could be rescued by dampening NRN1 levels. Since similar phenotypes have been previously described in SOD1 and TDP-43 mutant models, increased axonal growth and branching might represent broad early events in the pathogenesis of ALS.

The Schimke immuno-osseous dysplasia is an autosomal recessive genetic osteochondrodysplasia characterized by dysmorphism, spondyloepiphyseal dysplasia, nephrotic syndrome and frequently T cell immunodeficiency. Several hypotheses have been proposed to explain pathophysiology of the disease, however, the mechanism by which SMARCAL1 mutations cause the syndrome is elusive. Indeed, animal models of the disease are absent or useless to provide insight into the disease mechanism, since they do not recapitulate the phenotype. We generated a conditional knockdown model of SMARCAL1 in iPSCs to mimic conditions of cells with severe form the disease. Here, we characterize this model for the presence of phenotype linked to the replication caretaker role of SMARCAL1 using multiple cellular endpoints. Our data show that conditional knockdown of SMARCAL1 in human iPSCs induces replication-dependent and chronic accumulation of DNA damage triggering the DNA damage response. Furthermore, they indicate that accumulation of DNA damage and activation of the DNA damage response correlates with increased levels of R-loops and replication-transcription interference. Finally, we provide data showing that, in SMARCAL1-deficient iPSCs, DNA damage response can be maintained active also after differentiation, possibly contributing to the observed altered expression of a subset of germ layer-specific master genes. In conclusion, our conditional SMARCAL1 iPSCs may represent a powerful model where studying pathogenetic mechanisms of severe Schimke immuno-osseous dysplasia, thus overcoming the reported inability of different model systems to recapitulate the disease.

ABSTRACT Fragile X syndrome (FXS) is a neurodevelopmental disorder, characterized by intellectual disability and sensory deficits, caused by epigenetic silencing of the FMR1 gene and subsequent loss of its protein product, fragile X mental retardation protein (FMRP). Delays in synaptic and neuronal development in the cortex have been reported in FXS mouse models, however, the main goal of translating lab research into pharmacological treatments in clinical trials has been so far largely unsuccessful, leaving FXS a still incurable disease. Here, we generated 2D and 3D in vitro human FXS model systems based on isogenic FMR1 knock-out mutant and wild-type human induced pluripotent stem cell (hiPSC) lines. Phenotypical and functional characterization of cortical neurons derived from FMRP-deficient hiPSCs display altered gene expression and impaired differentiation when compared with the healthy counterpart. FXS cortical cultures show increased proliferation of GFAP positive cells, likely astrocytes, increased spontaneous network activity and depolarizing GABAergic transmission. Cortical brain organoid models show increased proliferation of glial cells, and bigger organoid size. Our findings demonstrate that FMRP is required to correctly support neuronal and glial cell proliferation, and to set the correct excitation/inhibition ratio in human brain development.