Abstract Long considered an accessory tubule of the male reproductive system, the epididymis is proving to be a key determinant of male fertility. In addition to its secretory role in ensuring functional maturation and survival of spermatozoa, the epididymis has a complex immune function. Indeed, it must manage both peripheral tolerance to sperm antigens foreign to the immune system and the protection of spermatozoa as well as the organ itself against pathogens ascending the epididymal tubule. Although our knowledge of the immunobiology of this organ is beginning to accumulate at the molecular and cellular levels, the organization of blood and lymphatic networks of this tissue, important players in the immune response, remains largely unknown. In the present report, we have taken advantage of a VEGFR3:YFP transgenic mouse model. Using high-resolution three-dimensional (3D) imaging and organ clearing coupled with multiplex immunodetections of lymphatic (LYVE1, PDPN, PROX1) and/or blood (PLVAP/Meca32) markers, we provide for the first time a simultaneous deep 3D view of the lymphatic and blood epididymal vasculature in the mature adult mouse as well as during postnatal development. Graphical abstract Summary of the expansion of the conventional and hybrid lymphatic vasculature during postnatal development of the murine epididymis.

ABSTRACT Myocardial infarction (MI) is a serious cardiovascular problem that causes myocardial injury due to blood flow obstruction to a specific myocardial area. Under ischemic-reperfusion settings, a burst of reactive oxygen species is generated, leading to redox imbalance that could be attributed to several molecules, including myoglobin. Myoglobin is dynamic and exhibits various oxidation-reduction states that have been a subject of attention in the food industry, specifically for meat consumers. However, rarely if ever, have the myoglobin optical properties been used to understand the pathology of MI. In the current study, we develop a novel imaging pipeline that integrates tissue clearing, confocal and light sheet fluorescence microscopy, combined with imaging analysis, and processing tools to investigate and characterize the oxidation-reduction states of myoglobin in the ischemic area of the myocardium post-MI. Using spectral imaging, we have characterized the endogenous fluorescence of the myocardium and demonstrated that it aligns with the spectral profile of myoglobin. Under ischemia-reperfusion experimental settings, we report that the infarcted myocardium spectral signature is similar to that of oxidized myoglobin signal that peaks 3 hours post-reperfusion and decreases with cardioprotection. These results were correlated with MI measurements by Late Gadolinium Enhancement MRI. In conclusion, this seminal work suggests that the redox state of myoglobin can be used as a promising imaging biomarker for characterizing and estimating the size of the MI during early phases of reperfusion.