ABSTRACT Weed is one of the major biotic stresses that causes severe loss of crop yield. Herbicide is one of the most cost-effective ways to control weeds. Thus, the development of herbicide-resistant crops is critical for the application of herbicides. To isolate new glufosinate ammonium resistance loci, we screened a rice ethyl methyl sulfonate-mutagenized library and obtained the g lufosinate a mmonium- r esistant mutant gar1-1 . GAR1 encodes auxin response factor 18 ( OsARF18 ). A G-to-A substitution in the coding region of OsARF18 results in loss of function of OsARF18 and thereby enhances glufosinate ammonium resistance of gar1-1 , which was confirmed by three additional CRISPR/Cas9-edited gar1 alleles. GLUTAMINE SYNTHETASE 1;1 ( OsGS1;1 ) and GLUTAMINE SYNTHETASE 1;2 ( OsGS1;2 ) were upregulated in gar1-1 upon glufosinate ammonium treatment, directly contributing to increased GS activity that enhances glufosinate ammonium herbicide resistance. We further show that OsARF18 suppresses OsGS1;1 and OsGS1;2 expression. Comparative transcriptomic analyses reveal a huge shift in the gene expression profile involved in stress tolerance and growth. A large number of detoxification-related genes are enriched in gar1-1 , which may also contribute to enhanced herbicide resistance. Moreover, stress tolerance-related genes are upregulated and growth-related genes are downregulated in gar1-1 , consistent with the improved tolerance to salt and osmotic stress of gar1 mutants. Taken together, our study demonstrates that OsARF18 is a negative regulator of glufosinate ammonium resistance as well as salt and osmotic stress tolerance, suggesting a role in balancing the stress response and growth.

The mutualistic plant rhizobacteria which improve plant development and productivity are known as plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR). It is more significant due to their ability to help the plants in different ways. The main physiological responses, such as malondialdehyde, membrane stability index, relative leaf water content, photosynthetic leaf gas exchange, chlorophyll fluorescence efficiency of photosystem-II, and photosynthetic pigments are observed in plants during unfavorable environmental conditions. Plant rhizobacteria are one of the more crucial chemical messengers that mediate plant development in response to stressed conditions. The interaction of plant rhizobacteria with essential plant nutrition can enhance the agricultural sustainability of various plant genotypes or cultivars. Rhizobacterial inoculated plants induce biochemical variations resulting in increased stress resistance efficiency, defined as induced systemic resistance. Omic strategies revealed plant rhizobacteria inoculation caused the upregulation of stress-responsive genes—numerous recent approaches have been developed to protect plants from unfavorable environmental threats. The plant microbes and compounds they secrete constitute valuable biostimulants and play significant roles in regulating plant stress mechanisms. The present review summarized the recent developments in the functional characteristics and action mechanisms of plant rhizobacteria in sustaining the development and production of plants under unfavorable environmental conditions, with special attention on plant rhizobacteria-mediated physiological and molecular responses associated with stress-induced responses.