Cold stress affects plant immune responses, and this process may involve the salicylic acid (SA) signaling pathway. However, the underlying mechanism by which low temperature signals coordinate with SA signaling to regulate plant immunity remains poorly characterized. Here, we found that low temperatures enhanced the disease resistance of Arabidopsis against Pseudomonas syringae pv. tomato (Pst) DC3000. This process required Inducer of CBF expression 1 (ICE1), the core transcription factor in cold-signal cascades. ICE1 physically interacted with Non-expresser of PR genes 1 (NPR1), the master regulator of the SA signaling pathway. Enrichment of ICE1 on the PR1 promoter and its ability to transcriptionally activate PR1 were enhanced by NPR1. Further analyses revealed that cold stress signals cooperate with SA signals to facilitate plant immunity against pathogen attack in an ICE1-dependent manner. Cold treatment promoted interactions of NPR1 and TGA3 with ICE1, and increased the ability of the ICE1-TGA3 complex to transcriptionally activate PR1. Together, our results characterize a previously unrecognized role of ICE1 as an indispensable regulatory node linking low temperature activated- and SA-regulated immunity. Discovery of a crucial role of ICE1 in coordinating multiple signals associated with immunity broadens our understanding of plant-pathogen interactions.

Objectives: Better outcomes in tuberculosis require new diagnostic and treatment monitoring tools. In this paper we evaluated the utility of a marker of M. tuberculosis viable count, the Molecular Bacterial Load assay (MBLA) for diagnosis and treatment monitoring of tuberculosis in a high burden setting. Methods: Patients with smear positive pulmonary tuberculosis from two sites in Tanzania and one each in Malawi and Mozambique. Sputum samples were taken weekly for the first 12 weeks of treatment and evaluated by MBLA and mycobacterial growth indicator tube method (MGIT). Results: The results of high and low positive control samples confirmed inter site reproducibility. Over the 12 weeks of treatment there was a steady decline in the viable bacterial load as measured by the MBLA that corresponds to rise in time to a positive result (TTP) in the Mycobacterial Growth Indicator Tube. Both MBLA and MGIT provided similar time to test negativity. Importantly, as treatment progressed samples in MGIT were increasingly likely to be contaminated, which compromised the acquisition of results but did not affect MBLA samples. Conclusions: MBLA produces a reproducible measure of Mtb viable count comparable to that of MGIT that is not compromised by contamination in a real-world setting. As a molecular test, the results can be available in as little as four hours and could allow health care professionals to identify rapidly patients who are failing therapy.